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Gemeinschaftspraxis Dres. Arnold Milbenbekämpfung: Eine unendliche Geschichte? 02.05.11 Landwirtschaftszentrum Haus Düsse Dr. Thorsten Arnold Fachtierarzt für Tierhygiene Bestandsbetreuung Wirtschaftsgeflügel Fachtierarzt für Mikrobiologie Molekularbiologie www.gefluegelspezialist.de Landwirtschaftszentrum Haus Düsse 02.05.11

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Gemeinschaftspraxis Dres. Arnold

Milbenbekämpfung:

Eine unendliche

Geschichte?

02.05.11 Landwirtschaftszentrum Haus Düsse

Dr. Thorsten ArnoldFachtierarzt für Tierhygiene

Bestandsbetreuung Wirtschaftsgeflügel

Fachtierarzt für Mikrobiologie

Molekularbiologie

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Tätigkeitsfelder www.gefluegelspezialist.de

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Legehennen

Legehennenelterntiere

Legehennenelterntieraufzuchten

Junghennenaufzuchten

Legehennenbetriebe

Broiler

Mastelterntiere

Mastbetriebe

Brüterei Putenmast

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Historisches www.gefluegelspezialist.de

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Etwas Satire!www.gefluegelspezialist.de

„In Hühnereiern aus deutschen Legebetrieben wurden hohe Nikotinrückstände gefunden.“

Vorteil: Nikotinverseuchte Hühner kann man vor der Schlachtung leichter einfangen ...

... sie können nicht so schnell davonlaufen mit ihrem Raucherbein.

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Die Vogelmilbe

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Vogelmilbenwww.gefluegelspezialist.de

Ornithonyssussylviarum

Nordische Vogelmilbe

Dermanyssusgallinae

Rote Vogelmilbe

Nord-Europa Nord - Amerika

Europa

Lebenszyklus 5-7 Tage

(Wirt erforderlich)

Lebenszyklus 4-9 Tage

(Temperaturabhängig)

Überlebensrate in der Umwelt

3-4 Wochen

Überlebensrate in der Umwelt

7-9 Monate

Klasse Arachnidae

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Ornithonyssus sylviarumwww.gefluegelspezialist.de

Im Gegensatz zur roten Vogelmilbe verbringt die nordische Vogelmilbe ihren gesamten Lebenszyklus auf dem Vogel. Dieser Zyklus besteht aus Ei, der Larve, den nymphalStadien und dem Erwachsenen und kann unter idealen Bedingungen innerhalb einer Woche durchgeführt werden.

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Dermanyssus gallinaewww.gefluegelspezialist.de

männlich weiblich

bis 0,7 mm bis 1,1 mm

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Lebenszyklus (ca. 7 Tage) www.gefluegelspezialist.de

Milbeneier

Larve mit sechs Beinen

Protonymphe mit acht Beinen

Deutonymphe(8 Beine)

tot

Milbe3 – 7 Eier pro

Milbe

2-3 Tage (20°C und mehr)

24-36 Std.

Blutsaugen nachts am Huhn Keine Nahrung

Unter 9°C keine Entwicklung!

0,5 mm lang

24-36 Std.

1. Häutung

2. Häutung

Blutsaugen 24-36 Std., 3. Häutung

Blutsaugen12-36 Std.

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Temperaturabhängigkeit des Lebenszyklus der Milbe

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* Die Milben hungerten vorher 4 Wochen!

STEINEGGER, Die Vogelmilbe

(Aus der Schweizerischen Lehr- und Versuchsanstalt für Geflügelzucht, Zollikofen-Bern, Direktor: Dr. P. Steinegger)

Die Vogelmilbe(Dermanyssus avium)

Beobachtungen über die Temperaturabhängigkeit des Entwicklungszyklus

Von P. Steinegger und R. Berger, Ing. agr.

Dauer von der Blutaufnahme ausgewachsener Milben bis zum Legebeginn unter verschiedenen

Temperaturbedingungen. (Proben jeweils 15 ausgewachsene Milben*)

Probe

Nr.

Temperatur erstes Ei Tage/Std. nach der

Probeentnahme

letztes Ei Tage/Std. nach der

Probeentnahme

1 2 °C keine Eier -

2 8 °C keine Eier -

3 12-15 °C 3 Tage 5 Tage

4 18 – 20 °C 24 Std. 72 Std.

5 32 – 35 °C 8 Std. 50 Std.

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Temperaturabhängigkeit des Lebenszyklus der Milbe

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STEINEGGER, Die Vogelmilbe

(Aus der Schweizerischen Lehr- und Versuchsanstalt für Geflügelzucht, Zollikofen-Bern, Direktor: Dr. P. Steinegger)

Die Vogelmilbe(Dermanyssus avium)

Beobachtungen über die Temperaturabhängigkeit des Entwicklungszyklus

Von P. Steinegger und R. Berger, Ing. agr.

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Dauer des Eistadiums (Zeitraum von der Eiablage bis zum Schlupf) bei verschiedenen Temperaturen.

Es wurden in verschiedenen Wiederholungen je 8 bis 15 Eier ausgelegt.

Probe

Nr.

Temperatur erstes Ei Tage/Std. nach der

Eiablage geschlüpft

letztes Ei Tage/Std. nach der

Eiablage geschlüpft

1 2 °C kein Schlupf -

2 6 - 9 °C kein Schlupf -

3 9 - 14 °C 8 Tage 12 Tage

4 12-15 °C 5 Tage 8 Tage

5 18 – 20 °C 50 Std. 96 Std.

6 33 – 35 °C 36 Std. 48 Std.Landwirtschaftszentrum Haus Düsse 02.05.11

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Problematik

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Problematik www.gefluegelspezialist.de

• D. gallinae stellt in der Legehennenhaltung eines der größten tierschutzrelevanten und wirtschaftlichenProbleme dar.

• Kein Zugelassenes Arzneimittel mit 0 Tagen Wartezeit auf Eier in Deutschland verfügbar!

• Diffizile rechtliche Situation beim Einsatz von Präparaten die im besetzten Stall, aber nicht am Tier zugelassen sind.

• Eine Vielzahl von Produkten und sog. „Beratern“ sind mit z.T. nachteiligen Folgen (Resistenzen) auf dem Markt

• Der Geflügelhalter befindet sich in einer oft schwierigen Situation mit der Folge eines schlechten Gesundheits-statusses seines Bestandes

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Generelle

Vorsichtsmaßnahmenwww.gefluegelspezialist.de

• Vor der Sprühbehandlung Futter und Wasser entfernen ?

• Während der Behandlung gelegte Eier sind zu entsorgen ?

• Wartezeit ?

? ? ?

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Belastungen für die Tiere - Tierschutz/reduzierte Produktivität -

• Unruhe

• Reduzierte Gewichtsaufnahme

• Verhaltensstörungen

• Anämie � Verluste

• Übertragung von Krankheitserregern (Stichwort: Zoonose-VO)

• Einbruch in der Legeleistung

• Schmutzige Eier

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Einfluss einer D. gallinae -Infektion auf die Produktivität

Influence of Dermanyssus gallinae and Ascaridia galli

infections on behaviour and health of laying hens Gallus

gallus domesticus).

Kilpinen O, Roepstorff A, Permin A, Norgaard-Nielsen G, Lawson LG, Simonsen HB

Br Poult Sci. 2005 Feb;46(1):26-34

The effect of infections with Dermanyssus gallinae (poultry red mite or

chicken mite) and Ascaridia galli (roundworm) on the behaviour and health

of laying hens was investigated. Six groups of 15 pullets (Isa Brown) were

kept in indoor pens from 18 weeks of age. Two groups were artificially

infected with D. gallinae, two groups with A. galli and two groups were kept

as uninfected controls. The hens were observed for behavioural reactions and

physiological changes (weight gain and various blood variables) to the

parasitic infections. nfections with D. gallinae resulted in reduced weight

gain, anaemia and even death of some of the hens. Behavioural changes

were also observed, as the mite-infected hens showed higher self-grooming

and head scratching both during the day and night. A. galli resulted in a

lower weight gain but no significant changes were seen in blood variables or

behavioural activities.

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Menschliche Gesundheit - Mitarbeiterschutz -

• Juckreiz

• Milbenstiche

• Allergien

• Übertragung von Zoonose-Erregern

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© www.birdmites.org

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Folgende

Infektions-Krankheiten

können nachweislich über

die „Rote Vogelmilbe“

übertragen werden.

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Kranheitsübertragung durch D. gallinae

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Experimental infection of Salmonella Enteritidis by

the poultry red mite, Dermanyssus gallinae.

Valiente Moro C, Chauve C, Zenner L

Vet Parasitol. 2007 May 31; 146 3-4: 329-336

Dermanyssus gallinae is an important ectoparasite of laying hens in Europe and it is

suspected of being a vector of pathogens. We carried out an in vitro study to evaluate the

role of D. gallinae as a vector of Salmonella enterica subsp. enterica serotype Enteritidis.

Two means of infecting the mite were tested: through the blood meal and after cuticular

contact. Mites became carriers of Salmonella immediately after the infection with 29%

and 53%, respectively, for oral route and cuticular contact. This percentage increased

over time until it reached 95% (D7) and 80% (D14). The numerical identification of

bacteria on the selective medium SM ID demonstrated the multiplication of Salmonella

inside previously infected mites. In addition, transovarial passage as well as transstadial

passage (from N1 to N2 stages) were demonstrated. Moreover, the observation of a

negative effect of Salmonella on Dermanyssus oviposition was also observed. Finally,

previously infected mites were able to contaminate the blood during the blood meal.

Therefore, it appears that D. gallinae may act as a biological vector of S. Enteritidis

under experimental conditions. It may represent a suitable environment for the

development of Salmonella and could be an additional factor for the persistence of

salmonellosis infection between successive flocks. Landwirtschaftszentrum Haus Düsse 02.05.11

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Detection of Salmonella sp. in Dermanyssus gallinae using an FTA filter-

based polymerase chain reaction.

Valiente Moro C, Desloire S, Chauve C, Zenner L

Medical and Veterinary Entomology (2007), 21, 148-152

Salmonella spp. bacteria are responsible for some of the most important zoonoses worldwide.

Because Dermanyssus gallinae (DeGeer) (Acari: Dermanyssidae) has been recently reported to

be an experimental vector of Salmonella Enteritidis, it would be of benefit to evaluate the

presence of this bacterium in mites. A molecular detection tool associating a simple filter-based

DNA preparation with a specific 16S rDNA Salmonella sp. polymerase chain reaction (PCR)

amplification was described. The limit of detection with this method was 2 x 10(4) bacteria per mite.

To adapt this technique for large-scale studies, two sizes of mite pools were tested and a

preliminary investigation was carried out on mites from 16 currently or previously contaminated

farms. Mites sampled from one farm of each type were positive for Salmonella, suggesting that

Dermanyssus could act as a reservoir between flocks. In further investigations, it will be

necessary to carry out a large-scale study to assess the role of D. gallinae in the epidemiology of

avian salmonellosis.

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Salmonellenübertragung durch die Rote Vogelmilbe

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PCR-Methode um S. enteritidis in Milben festzustellen

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Kranheitsübertragung durch D. gallinae

The poultry red mite, Dermanyssus gallinae, a potential

vector of Erysipelothrix rhusiopathiae causing

erysipelas in hens. Chirico J, Eriksson H, Fossum O, Jansson D.

Med Vet Entomol. 2003 Jun;17(2):232-4

…. In poultry, erysipelas may cause sudden high mortality due to septicemia.

This communication describes the first isolation of E. rhusiopathiae from the

haematophagous poultry red mite, Dermanyssus gallinae DeGeer (Acari:

Dermanyssidae), that was collected on three farms where hen erysipelas was

diagnosed. The bacteria were isolated from the integument as well as from

the interior of the mites. Serotypes 1a and 1b of E. rhusiopathiae found in the

mites corresponded with those isolated from the diseased birds. These findings

imply that D. gallinae is a potential vector of E. rhusiopathiae. The current lack

of effective measures to control D. gallinae causes recurring mite problems in

poultry facilities once afflicted by this parasite. Consequently, mites containing

E. rhusiopathiae may act as reservoir hosts of this bacterium, allowing it to

persist in the poultry house between flock cycles as a source of infection for the

replacement pullets. The zoonotic potentials of both E. rhusiopathiae and D.

gallinae should also be considered.Landwirtschaftszentrum Haus Düsse 02.05.11

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Kranheitsübertragung durch D. gallinae

Study of Dermanyssus gallinae as a carrier of

Pasteurella multocida.

Petrov D.

Vet Med Nauki. 1975;12(5):32-6.

Microbiologic studies and biologic experiments revealed that Pasteurella

multocida persists in the body of Dermanyssus gallinae mites after these

engorge with blood from infected birds. Depending on the temperature of the

environment the carrier status was shown to last from 42 to 64 days. It is

reported that the red mite acts as a vector and does not transmit Pasteurellae

directly. However, the parasite is potentially hazardous in maintaining and

passing on the infection through other indirect routes. Carrier status has been

established in naturally infected Dermanyssus gallinae mites.

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Bekämpfungs-strategien

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Grundsätzliche Maßnahmen die

es zu beachten gilt! www.gefluegelspezialist.de• Im leeren Stall vor dem Ausräumen der Einrichtungen alle Flächen

besprühen, um einen großen Teil der Milben, Nymphen, Larven und Eier bereits zu vernichten.

• Ausräumen aller beweglichen Einrichtungen und des Nestmaterials, um Verstecke wie Ecken, Auflageflächen usw. freizulegen.

• Wände und Einrichtungen (auch Gitterstäbe usw.) gründlich mit Druck säubern, um Schmutz und verbliebene Milben wegzuspülen.

• Möglichst bald nach Neubelegung des Bestandes bevorzugte Milbenverstecke/Sammelplätze intensiv besprühen, da evtl. noch vorhandene Milben eine Blutmahlzeit benötigen und sehr aktiv werden.

• In warmen Ställen (+ 20°bis + 35°C) unabhängig von der Jahreszeit regelmäßig alle 4 bis 6 Wochen mindestens die bevorzugten Milbenverstecke/ Sammelplätze kontrollieren.

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Bekämpfungsstrategien

I. Chemische Bekämpfungstrategien• Für die Anwendung am Tier bzw. im

besetzten Stall zugelassene Arzneimittel

• Frei verkäufliche Mittel für den besetzten Stall

• Frei verkäufliche Mittel für den unbesetzten Stall

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III. Physikalische Bekämpfungsstrategien • Erhitzen des Stalles• Ausbringung von flüssigem Stickstoff

IV. Biophysikalische Bekämpfungsstrategien• Amorphes Kieselgur

II. Biologische Bekämpfungsstrategien • Verschiedenste Kräuterextrakte

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Biophysikalische Verfahrenwww.gefluegelspezialist.de

Wirkstoff: amorphes Siliciumdioxid (100 %)z.B. Biobeck PA 910®, InsetoSec®

Flüssig auszubringende Präparate: (Indispron® D 110)Siligur F - 46Inter ®Silikatlsg.

Wirkungsmechanismus:

Siliciumdioxid dringt in die Atmungsorgane der Milben ein und es kommt zu einer Austrocknung von Innen heraus.

Darüber hinaus blockieren die feinen Sliciumdioxid-Kristalle die Gelenke und führen damit zu einer Immobilisierung der Milben.

Eine Teilchengröße von 2 µm bis 4 µm garantiert die beste Effektivität.

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Aufwandmengenwww.gefluegelspezialist.de

Kleingruppe/Voliere: m2 x 2,5 x 0,4 = Gebrauchslösung

Bodenhaltung: m2 x 1,5 x 0,4 = Gebrauchslösung

Klein-gruppe

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Was ist bei der Ausbringung geeigneter Präparate zu

beachten!

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Ausbringung des Milbenmittelswww.gefluegelspezialist.de

„Entscheidend für eine erfolgreiche Milbenbekämpfung unter

Praxisbedingungen ist nicht nur die Auswahl des richtigen Mittels sondern auch die professionelle Ausbringung

durch motivierte Mitarbeiter.“

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Ausbringungwww.gefluegelspezialist.de

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Ausbringung

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Ausbringung

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Extremer Milbenbefall

- Bilder aus der Sektion -

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Resistenzen

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Resistenz gegen Organophosphate

und KarbamateGemeinschaftspraxis

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• Resistenz beruht auf einer Modifikation der Acethylcholinesterase

• Es kommt zu einer strukturellen Veränderung der Acetylcholinesterase, so dass Organophosphate und Karbamate nicht mehr greifen können

• Für einige Insekten/Schädlinge ist die Region auf der diese Veränderungen lokalisiert sind bereits characterisiert

• Es handelt sich um eine Mutation im ace Gen das für die Acethylcholinesterase kodiert

• Meist sind sogar nur einzelne Aminosäuren ausgetauscht

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Wirkmechanismus versusResistenz

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Acetylcholin (Neurotransmitter)

Organophosphate/Karbamate

Acetylcholinesterase

(hydrolysiert den Neurotransmitter)

Phosphorylenzym

(paralyse ist die Folge)

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Entstehung von Resistenzen Gemeinschaftspraxis

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• Exzessiver und unkontrollierter Einsatz von Organo-phosphaten und Karbamaten in der Vergangenheit.

• Ausbringung von zu geringen Mengen in den Ställen und damit auch zu geringen Dosierungen.

• Schnelle Etablierung von sehr großen Milbenpopulationen in den Beständen unter optimalen Bedingungen und damit optimale Bedingungen für die Entstehung von resistenten Populationen.

• Einsatz von Schädlingsbekämpfungsmitteln in leeren Ställen (Serviceperiode) mit ähnlichem Wirkungsspektrum wie Organophosphate und Karbamate (z.B. DanadimProgress)

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Danadim® progressGemeinschaftspraxis

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• Handelsname: Danadim® Progress

• Verwendung des Stoffes / der Zubereitung: Akarizid/Insektizid

• Hersteller/Lieferant: Stähler Deutschland GmbH & Co. KGStader ElbstrasseD-21683 Stade

• Wirkstoff: Dimethoat (ISO)(Phosphorsäureester)

• Wirkung: Phosphorsäureester sind Hemmer der Cholinesterasen (Acetylcholinesterase (AChE) und Butyrylcholinesterase (BuChE)). Kontaktgifte

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Gemeinschaftspraxis

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Resistenztest

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Milbenresistenztest, Variante A Gemeinschaftspraxis

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Simulierung einer Sprühbehandlung

• etwa 30 – 50 aktiv bewegliche Vogelmilben werden zwischen zwei Filterpapierscheiben („Sandwichmethode“) in die jeweiligen zu prüfenden Mittel und Konzentrationen für eine Minute eingetaucht

• danach getrocknet und mittels Pinsel in frische Filterpapiertüten überführt

• die Tütchen werden milbendicht verschlossen und für 24 Stunden bei 28°C und 90 % relativer Feuchte aufbewahrt

• danach werden die Tütchen geöffnet und die Mortalität der Vogelmilben durch einfaches auszählen ermittelt.

• es wird eine unbehandelte Kontrolle und eine Lösungsmittelkontrolle mitgeführt

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Milbenresistenztest, Variante A Gemeinschaftspraxis

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Simulierung einer behandelten Unterlage

• Filterpapiere werden zu Tütchen gefaltet und in die zu prüfenden Mittel bzw. Konzentrationen getränkt (imprägniert), danach für 24 Stunden getrocknet

• danach werden die Tütchen mit etwa 30-50 Vogelmilben beschickt

• die Tütchen werden milbendicht verschlossen und für 24 Stunden bei 28°C und 90 % relativer Feuchte aufbewahrt.

• danach werden die Tütchen geöffnet und die Mortalität der Vogelmilben durch einfaches auszählen ermittelt.

• es wird eine unbehandelte Kontrolle und eine Lösungs-mittelkontrolle mitgeführt!

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Milbenresistenztest, Variante A Gemeinschaftspraxis

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Milbenreisistenztest, Variante B Gemeinschaftspraxis

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ca. 50 Milben

5 ml des zu testenden Produktes Einwirkungszeit zwischen 1 – 5

Minuten

Verdünnung und Neutralisierung

des Produktes mit Wasser.

Filter wird aus der Halterung genommen und in eine Petrischale gelegt, die Milben werden gezählt und dann erneut nach 24 Std. gezählt (lebend + tot).

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Milbenreisistenztest

publiziertes StandardverfahrenGemeinschaftspraxis

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Assessment of susceptibility of the poultry red mite Dermanyssus

gallinae (Acari: Dermanyssidae) to some acaricides using an adapted

filter paper based bioassay

B.B. Thind and H.L. Ford

Central Science Laboratory, Department for Environment, Food and Rural Affairs,

Sand Hutton, York

A previously described bioassay was modified to assess the response of the poultry red mite, an

important ectoparasite of fowl, to a selected group of acaricides. The adapted bioassay is simple to

use, escape-proof and provides data that can be subjected to probit analysis. The reproducibility of

the method was assessed by three tests with α-cypermethrin against a reference strain, which

produced dose-response lines that did not differ significantly (χ2 = 1.39, 2 d.f., p = 0.50), and had a

derived common slope of 1.89. In addition, a limited evaluation study enabled assessment of

response to commercial formulations of bifenthrin, bifenthrin + malathion and cypermethrin by field

populations of the poultry red mite.

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Milbenreisistenztest

publiziertes StandardverfahrenGemeinschaftspraxis

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Milbenresistenztest

publiziertes StandardverfahrenGemeinschaftspraxis

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Vorteile des neuen Verfahrens:

• International anerkanntes Verfahren

• Standardisierbares Verfahren (Akkreditierung des Verfahrens in unserem Veterinärlabor ist erfolgt)

• Ermöglicht intensives Monitoring

• Hoher Durchsatz möglich

• Anwendbar auf verschiedenste zu testende Produkte.

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Vielen Dank für Ihre Aufmerksamkeit!

Ich freue mich auf Ihre Fragen!

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