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Bacterial membrane vesicles (MVs) Saarbrücken, 01.02.2017 Seminarvortrag Raphaela Fricke

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Bacterial membrane vesicles (MVs)

Saarbrücken, 01.02.2017

Seminarvortrag

Raphaela Fricke

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> Überblick

Einleitung:

- Eigenschaften und Merkmale

- Biogenese

Anwendungen:

Seite

- MVs als Antigene

- Immobilisierung von Enzymen

- Einsatz in der Krebstherapie

Fazit

Seminarvortrag Raphaela Fricke 201.02.2017

Berleman, James; Auer, Manfred (2013): The role of

bacterial outer membrane vesicles for intra- and

interspecies delivery. In: Environmental microbiology

15 (2), S. 347–354

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> Einleitung

Membranvesikel

- Keine „echten“ Zellen

- Kugelförmige Bilayer

- Zwischen 10 und 300 nm Durchmesser

SeiteSeminarvortrag Raphaela Fricke 301.02.2017

- Natürlicher Weise von Gram-negativen

Bakterien gebildet

- Funktion bei interzellulärer Interaktion

- Ähnliches Verhalten wie das eines Virus‘

� vielversprechende Eigenschaften für vielerlei Anwendungen

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> Einleitung

Membranvesikel – Biogenese

3 Hauptmodelle

I) Verlust oder Relokalisierung von kovalenten Bindungen zwischen der

Membran und der darunter liegenden Peptidoglykanschicht

SeiteSeminarvortrag Raphaela Fricke 601.02.2017

Membran und der darunter liegenden Peptidoglykanschicht

II) Akkumulation von Peptidoglykan-Fragmenten oder misgefaltete

Proteine im periplasmatischen Raum � Turgordruck auf die

Membran, sodass diese sich ausbeult und abschnürt

III) Anreicherung von Membran-krümmenden Molekülen

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> Anwendung

Membranvesikel als Antigene

- Sowohl Membranproteine als auch proteinogene Virulenzfaktoren in MVs

enthalten

� Auslösung einer Immunantwort durch MVs

- Hohes Potential für MVs als potentielle Antigene für die

SeiteSeminarvortrag Raphaela Fricke 701.02.2017

- Hohes Potential für MVs als potentielle Antigene für die

Impfstoffproduktion

- Aufreinigung und Isolation von Antigenen in hoher Quantität oft aufwändig

- Erzeugung von MVs, die das gewünschte Antigen enthalten � Subunit-

Impfstoffe

- Aufreinigung von MVs durch einfache Ultrazentrifugation

Abera Bioscience AB | Horn International. Online verfügbar unter http://hornonline.com/abera-bioscience-ab/, zuletzt geprüft am 31.01.2017.

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> Anwendung

Membranvesikel zur Enzym-Immobilisierung

- Immobilisierung von Zellen oder Enzymen ist schon länger eine gängige

Technik (mittels Harz)

- Vorteile: Wiederverwertbarkeit und effektiver Transport der

Biokatalysatoren zum Reaktor

SeiteSeminarvortrag Raphaela Fricke 901.02.2017

- Immer weitere Ansätze zur Immobilisierung werden gesucht

- MVs tragen die Enzyme entweder im Inneren, auf der Oberfläche oder in

den Membranen selbst � anders als konventionelle Ansätze

- MVs sind sehr viel kleiner � Nanocarrier für Biokatalysatoren

� Zu beachten: Lokalisation und Größe der Enzyme!

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> Anwendung

Membranvesikel zur Enzym-ImmobilisierungBeispiel: Meiothermus thermoruber bildet MVs mit keratolytische Proteasen

� MVs haben einen protektiven Effekt für diese Proteasen

Ziel: Modifizierung des Gens für die keratolytische Protease, sodass eine

größere Menge durch Proteinfusion an MVs gelangt

SeiteSeminarvortrag Raphaela Fricke 1001.02.2017

größere Menge durch Proteinfusion an MVs gelangt

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> Anwendung

Membranvesikel als Krebstherapeutika

- Bakterielle MVs haben eine große Ähnlichkeit zu Exosomen von

Säugerzellen

- Exosomen beinhalten unter anderem miRNAs oder siRNAs

� diese können die Genexpression in Target-Zellen posttranslational

beeinflussen oder kontrollieren

SeiteSeminarvortrag Raphaela Fricke 1101.02.2017

beeinflussen oder kontrollieren

- Jedoch: kein Anzeichen dieser RNAs in bakteriellen MVs

- Bisher nur wenig klinische Anwendungen, da

entsprechende Transportsysteme fehlten

� großes Potential für MVs

http://www.phri.org/news/news_publication

s.asp, zuletzt geprüft am 31.01.2017

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> Anwendung

Membranvesikel als Krebstherapeutika

Ansatz: Exosomen, die miRNA/siRNA beinhalten, als Therapie gegen

verschiedene Krebsformen

- Bisher: künstliche Liposomen als effiziente Transporter

SeiteSeminarvortrag Raphaela Fricke 1201.02.2017

- Bisher: künstliche Liposomen als effiziente Transporter

- Wahrscheinlichkeit jedoch höher eine Immunantwort auszulösen

� Exosomen besitzen größeres Potential für den Wirkstofftransport als

natürliche Träger

� Ersetzten von Exosomen durch MVs

� Erzeugung von MVs, die antikanzerogene miRNAs oder siRNAs laden

� Inhibierung von metastatischen Tumorzellen

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> Anwendung

Membranvesikel als Krebstherapeutika

Anwendungsbeispiel

- Zellspezifische Markierung und Abtötung von Krebszellen durch siRNA die

das kinesin spindle protein (KSP) inhibiert

SeiteSeminarvortrag Raphaela Fricke 1301.02.2017

- Mutierter E.coli Stamm:

� MVs tragen human epidermal growth factor receptor 2 (HER2)-

spezifischen Affibody in der Membran (als Liganden)

- Injektion von siRNA-bepackten MVs führt zu markiertem Gene silencing

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> Anwendung

Membranvesikel als Krebstherapeutika

- Exosomen mit miRNA

- Transmempranrezeptor mit GE11-Peptid

fusioniert (blaue Balken mit schwarzem

Dreieck)

SeiteSeminarvortrag Raphaela Fricke 1401.02.2017

Dreieck)

- weiße Dreiecke: EGF-Rezeptoren

�GE11 bindet an EGF-Rezeptor des

Krebsgewebes

�Zytotoxischer Effekt und Inhibierung

der Tumorentwicklung

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> Anwendung

Membranvesikel als Krebstherapeutika

Vorteile Nachteile

Target-spezifische Behandlung möglich Bisher nur am Tiermodell getestet

Möglichkeit der variablen Beladung Keine genauen Kenntnisse über Biogenese

SeiteSeminarvortrag Raphaela Fricke 1501.02.2017

Möglichkeit der variablen Beladung Keine genauen Kenntnisse über Biogenese

Large-scale Produktion möglich durch kostengünstige Bakterienfermentation

Noch sehr wenig erforscht

Wegen der Spezifität nur wenig Nebenwirkungen (großer Faktor in der Krebstherapie!)

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> Zusammenfassung

Fazit

3 Methoden zur Anwendung von MVs

- Membranvesikel als Antigene

- Für die Immobilisierung und den Transport in der Biotechnologie

- Als Nanomedizin für zellspezifischen Wirkstofftransport

SeiteSeminarvortrag Raphaela Fricke 1601.02.2017

- Als Nanomedizin für zellspezifischen Wirkstofftransport

- Für die Zukunft werden noch viele weitere Anwendungen erwartet

� dafür notwendig: mehr Informationen und somit erweitertes Verständnis

von bakteriellen Membranvesikeln

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> Quellen

Watanabe, Kunihiko (2016): Bacterial membrane vesicles (MVs): novel tools as nature- and nano-carriers forimmunogenic antigen, enzyme support, and drug delivery. In: Applied microbiology and biotechnology 100 (23), S. 9837–9843. DOI: 10.1007/s00253-016-7916-7

Roier, Sandro; Zingl, Franz G.; Cakar, Fatih; Durakovic, Sanel; Kohl, Paul; Eichmann, Thomas O. et al. (2016): A novel mechanism for the biogenesis of outer membrane vesicles in Gram-negative bacteria. In: Nature communications 7, S. 10515. DOI: 10.1038/ncomms10515

Bas van de Waterbeemd: Next-Generation Outer Membrane Vesicle Vaccines. Online verfügbar unter http://www.wur.nl/en/show/Bas-van-de-Waterbeemd-NextGeneration-Outer-Membrane-Vesicle-Vaccines.htm, zuletzt geprüft am 24.01.2017

McMahon, Kenneth J.; Castelli, Maria E.; Vescovi, Eleonora García; Feldman, Mario F. (2012): Biogenesis ofOuter Membrane Vesicles in Serratia marcescens Is Thermoregulated and Can Be Induced by Activation ofthe Rcs Phosphorelay System. In: J. Bacteriol. 194 (12), S. 3241–3249. DOI: 10.1128/JB.00016-12.

Gujrati, Vipul; Kim, Sunghyun; Kim, Sang-Hyun; Min, Jung Joon; Choy, Hyon E.; Kim, Sun Chang; Jon,

Seite

Gujrati, Vipul; Kim, Sunghyun; Kim, Sang-Hyun; Min, Jung Joon; Choy, Hyon E.; Kim, Sun Chang; Jon, Sangyong (2014): Bioengineered bacterial outer membrane vesicles as cell-specific drug-delivery vehicles forcancer therapy. In: ACS nano 8 (2), S. 1525–1537. DOI: 10.1021/nn405724x.

Kulp, Adam; Kuehn, Meta J. (2010): Biological functions and biogenesis of secreted bacterial outer membrane vesicles. In: Annual review of microbiology 64, S. 163–184. DOI: 10.1146/annurev.micro.091208.073413.

Kaparakis-Liaskos, Maria; Ferrero, Richard L. (2015): Immune modulation by bacterial outer membranevesicles. In: Nature reviews. Immunology 15 (6), S. 375–387. DOI: 10.1038/nri3837.

Marra, Emanuele; Palombo, Fabio; Ciliberto, Gennaro; Aurisicchio, Luigi (2013): Kinesin spindle proteinSiRNA slows tumor progression. In: Journal of cellular physiology 228 (1), S. 58–64. DOI: 10.1002/jcp.24103.

U.S. Department of Health and Human Services (2017): Vaccines.gov. U.S. Department of Health and Human Services. Online verfügbar unter https://www.vaccines.gov/basics/types/index.html#subunit, zuletztaktualisiert am 23.01.2017, zuletzt geprüft am 24.01.2017

Seminarvortrag Raphaela Fricke1701.02.2017

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Vielen Dank für die Aufmerksamkeit!

Seminarvortrag Raphaela Fricke 1801.02.2017

Bas van de Waterbeemd: Next-Generation Outer Membrane Vesicle Vaccines. Online

verfügbar unter http://www.wur.nl/en/show/Bas-van-de-Waterbeemd-NextGeneration-

Outer-Membrane-Vesicle-Vaccines.htm, zuletzt geprüft am 24.01.2017