Bacterial membrane vesicles (MVs) · Membranvesikelzur Enzym-Immobilisierung Beispiel:...
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Bacterial membrane vesicles (MVs)
Saarbrücken, 01.02.2017
Seminarvortrag
Raphaela Fricke
> Überblick
Einleitung:
- Eigenschaften und Merkmale
- Biogenese
Anwendungen:
Seite
- MVs als Antigene
- Immobilisierung von Enzymen
- Einsatz in der Krebstherapie
Fazit
Seminarvortrag Raphaela Fricke 201.02.2017
Berleman, James; Auer, Manfred (2013): The role of
bacterial outer membrane vesicles for intra- and
interspecies delivery. In: Environmental microbiology
15 (2), S. 347–354
> Einleitung
Membranvesikel
- Keine „echten“ Zellen
- Kugelförmige Bilayer
- Zwischen 10 und 300 nm Durchmesser
SeiteSeminarvortrag Raphaela Fricke 301.02.2017
- Natürlicher Weise von Gram-negativen
Bakterien gebildet
- Funktion bei interzellulärer Interaktion
- Ähnliches Verhalten wie das eines Virus‘
� vielversprechende Eigenschaften für vielerlei Anwendungen
> Einleitung
Membranvesikel – Biogenese
3 Hauptmodelle
I) Verlust oder Relokalisierung von kovalenten Bindungen zwischen der
Membran und der darunter liegenden Peptidoglykanschicht
SeiteSeminarvortrag Raphaela Fricke 601.02.2017
Membran und der darunter liegenden Peptidoglykanschicht
II) Akkumulation von Peptidoglykan-Fragmenten oder misgefaltete
Proteine im periplasmatischen Raum � Turgordruck auf die
Membran, sodass diese sich ausbeult und abschnürt
III) Anreicherung von Membran-krümmenden Molekülen
> Anwendung
Membranvesikel als Antigene
- Sowohl Membranproteine als auch proteinogene Virulenzfaktoren in MVs
enthalten
� Auslösung einer Immunantwort durch MVs
- Hohes Potential für MVs als potentielle Antigene für die
SeiteSeminarvortrag Raphaela Fricke 701.02.2017
- Hohes Potential für MVs als potentielle Antigene für die
Impfstoffproduktion
- Aufreinigung und Isolation von Antigenen in hoher Quantität oft aufwändig
- Erzeugung von MVs, die das gewünschte Antigen enthalten � Subunit-
Impfstoffe
- Aufreinigung von MVs durch einfache Ultrazentrifugation
Abera Bioscience AB | Horn International. Online verfügbar unter http://hornonline.com/abera-bioscience-ab/, zuletzt geprüft am 31.01.2017.
> Anwendung
Membranvesikel zur Enzym-Immobilisierung
- Immobilisierung von Zellen oder Enzymen ist schon länger eine gängige
Technik (mittels Harz)
- Vorteile: Wiederverwertbarkeit und effektiver Transport der
Biokatalysatoren zum Reaktor
SeiteSeminarvortrag Raphaela Fricke 901.02.2017
- Immer weitere Ansätze zur Immobilisierung werden gesucht
- MVs tragen die Enzyme entweder im Inneren, auf der Oberfläche oder in
den Membranen selbst � anders als konventionelle Ansätze
- MVs sind sehr viel kleiner � Nanocarrier für Biokatalysatoren
� Zu beachten: Lokalisation und Größe der Enzyme!
> Anwendung
Membranvesikel zur Enzym-ImmobilisierungBeispiel: Meiothermus thermoruber bildet MVs mit keratolytische Proteasen
� MVs haben einen protektiven Effekt für diese Proteasen
Ziel: Modifizierung des Gens für die keratolytische Protease, sodass eine
größere Menge durch Proteinfusion an MVs gelangt
SeiteSeminarvortrag Raphaela Fricke 1001.02.2017
größere Menge durch Proteinfusion an MVs gelangt
> Anwendung
Membranvesikel als Krebstherapeutika
- Bakterielle MVs haben eine große Ähnlichkeit zu Exosomen von
Säugerzellen
- Exosomen beinhalten unter anderem miRNAs oder siRNAs
� diese können die Genexpression in Target-Zellen posttranslational
beeinflussen oder kontrollieren
SeiteSeminarvortrag Raphaela Fricke 1101.02.2017
beeinflussen oder kontrollieren
- Jedoch: kein Anzeichen dieser RNAs in bakteriellen MVs
- Bisher nur wenig klinische Anwendungen, da
entsprechende Transportsysteme fehlten
� großes Potential für MVs
http://www.phri.org/news/news_publication
s.asp, zuletzt geprüft am 31.01.2017
> Anwendung
Membranvesikel als Krebstherapeutika
Ansatz: Exosomen, die miRNA/siRNA beinhalten, als Therapie gegen
verschiedene Krebsformen
- Bisher: künstliche Liposomen als effiziente Transporter
SeiteSeminarvortrag Raphaela Fricke 1201.02.2017
- Bisher: künstliche Liposomen als effiziente Transporter
- Wahrscheinlichkeit jedoch höher eine Immunantwort auszulösen
� Exosomen besitzen größeres Potential für den Wirkstofftransport als
natürliche Träger
� Ersetzten von Exosomen durch MVs
� Erzeugung von MVs, die antikanzerogene miRNAs oder siRNAs laden
� Inhibierung von metastatischen Tumorzellen
> Anwendung
Membranvesikel als Krebstherapeutika
Anwendungsbeispiel
- Zellspezifische Markierung und Abtötung von Krebszellen durch siRNA die
das kinesin spindle protein (KSP) inhibiert
SeiteSeminarvortrag Raphaela Fricke 1301.02.2017
- Mutierter E.coli Stamm:
� MVs tragen human epidermal growth factor receptor 2 (HER2)-
spezifischen Affibody in der Membran (als Liganden)
- Injektion von siRNA-bepackten MVs führt zu markiertem Gene silencing
> Anwendung
Membranvesikel als Krebstherapeutika
- Exosomen mit miRNA
- Transmempranrezeptor mit GE11-Peptid
fusioniert (blaue Balken mit schwarzem
Dreieck)
SeiteSeminarvortrag Raphaela Fricke 1401.02.2017
Dreieck)
- weiße Dreiecke: EGF-Rezeptoren
�GE11 bindet an EGF-Rezeptor des
Krebsgewebes
�Zytotoxischer Effekt und Inhibierung
der Tumorentwicklung
> Anwendung
Membranvesikel als Krebstherapeutika
Vorteile Nachteile
Target-spezifische Behandlung möglich Bisher nur am Tiermodell getestet
Möglichkeit der variablen Beladung Keine genauen Kenntnisse über Biogenese
SeiteSeminarvortrag Raphaela Fricke 1501.02.2017
Möglichkeit der variablen Beladung Keine genauen Kenntnisse über Biogenese
Large-scale Produktion möglich durch kostengünstige Bakterienfermentation
Noch sehr wenig erforscht
Wegen der Spezifität nur wenig Nebenwirkungen (großer Faktor in der Krebstherapie!)
> Zusammenfassung
Fazit
3 Methoden zur Anwendung von MVs
- Membranvesikel als Antigene
- Für die Immobilisierung und den Transport in der Biotechnologie
- Als Nanomedizin für zellspezifischen Wirkstofftransport
SeiteSeminarvortrag Raphaela Fricke 1601.02.2017
- Als Nanomedizin für zellspezifischen Wirkstofftransport
- Für die Zukunft werden noch viele weitere Anwendungen erwartet
� dafür notwendig: mehr Informationen und somit erweitertes Verständnis
von bakteriellen Membranvesikeln
> Quellen
Watanabe, Kunihiko (2016): Bacterial membrane vesicles (MVs): novel tools as nature- and nano-carriers forimmunogenic antigen, enzyme support, and drug delivery. In: Applied microbiology and biotechnology 100 (23), S. 9837–9843. DOI: 10.1007/s00253-016-7916-7
Roier, Sandro; Zingl, Franz G.; Cakar, Fatih; Durakovic, Sanel; Kohl, Paul; Eichmann, Thomas O. et al. (2016): A novel mechanism for the biogenesis of outer membrane vesicles in Gram-negative bacteria. In: Nature communications 7, S. 10515. DOI: 10.1038/ncomms10515
Bas van de Waterbeemd: Next-Generation Outer Membrane Vesicle Vaccines. Online verfügbar unter http://www.wur.nl/en/show/Bas-van-de-Waterbeemd-NextGeneration-Outer-Membrane-Vesicle-Vaccines.htm, zuletzt geprüft am 24.01.2017
McMahon, Kenneth J.; Castelli, Maria E.; Vescovi, Eleonora García; Feldman, Mario F. (2012): Biogenesis ofOuter Membrane Vesicles in Serratia marcescens Is Thermoregulated and Can Be Induced by Activation ofthe Rcs Phosphorelay System. In: J. Bacteriol. 194 (12), S. 3241–3249. DOI: 10.1128/JB.00016-12.
Gujrati, Vipul; Kim, Sunghyun; Kim, Sang-Hyun; Min, Jung Joon; Choy, Hyon E.; Kim, Sun Chang; Jon,
Seite
Gujrati, Vipul; Kim, Sunghyun; Kim, Sang-Hyun; Min, Jung Joon; Choy, Hyon E.; Kim, Sun Chang; Jon, Sangyong (2014): Bioengineered bacterial outer membrane vesicles as cell-specific drug-delivery vehicles forcancer therapy. In: ACS nano 8 (2), S. 1525–1537. DOI: 10.1021/nn405724x.
Kulp, Adam; Kuehn, Meta J. (2010): Biological functions and biogenesis of secreted bacterial outer membrane vesicles. In: Annual review of microbiology 64, S. 163–184. DOI: 10.1146/annurev.micro.091208.073413.
Kaparakis-Liaskos, Maria; Ferrero, Richard L. (2015): Immune modulation by bacterial outer membranevesicles. In: Nature reviews. Immunology 15 (6), S. 375–387. DOI: 10.1038/nri3837.
Marra, Emanuele; Palombo, Fabio; Ciliberto, Gennaro; Aurisicchio, Luigi (2013): Kinesin spindle proteinSiRNA slows tumor progression. In: Journal of cellular physiology 228 (1), S. 58–64. DOI: 10.1002/jcp.24103.
U.S. Department of Health and Human Services (2017): Vaccines.gov. U.S. Department of Health and Human Services. Online verfügbar unter https://www.vaccines.gov/basics/types/index.html#subunit, zuletztaktualisiert am 23.01.2017, zuletzt geprüft am 24.01.2017
Seminarvortrag Raphaela Fricke1701.02.2017
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Vielen Dank für die Aufmerksamkeit!
Seminarvortrag Raphaela Fricke 1801.02.2017
Bas van de Waterbeemd: Next-Generation Outer Membrane Vesicle Vaccines. Online
verfügbar unter http://www.wur.nl/en/show/Bas-van-de-Waterbeemd-NextGeneration-
Outer-Membrane-Vesicle-Vaccines.htm, zuletzt geprüft am 24.01.2017