Selbstorganisation-SS08 Teil Scheer · Bola – Amphiphile: Hydrophobe Wechselwirkungen Kato et al,...

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Selbstorganisation SS 2008 Paula Braun Hugo Scheer Termine (jeweils 11 – 12:30) 17.4. Scheer 24.4. Scheer 8.5. Scheer 15.5. Braun 29.5. Braun 5.6. Braun

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Selbstorganisation

SS 2008

Paula BraunHugo Scheer

Termine (jeweils 11 – 12:30)

17.4. Scheer24.4. Scheer8.5. Scheer

15.5. Braun29.5. Braun5.6. Braun

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Kraniche im Rift-Valley

Y. Arthus-Bertrand, Erde von oben, Knesebeck 2001

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Banc d‘Arguin, nahe Arcachon

Y. Arthus-Bertrand, Erde von oben, Knesebeck 2001

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Dünen bei Nuakchott, Mauretanien

Y. Arthus-Bertrand, Erde von oben, Knesebeck 2001

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Der rote Fleck

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Erodiertes Pinatubo Aschfeld

Y. Arthus-Bertrand, Erde von oben, Knesebeck 2001

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Oberflächenwellen auf Katalysator

Ansichten Einsichten Modelle: VW Stiftung 1998

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cAMP-Wellen in Dictyostelium discoideum

Siegert und Weijer, Curr. Biol. 5, 937, 1995

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J. Gleick, Chaos, Penguin. London 1987

Mäander

Y. Arthus-Bertrand, Erde von oben, Knesebeck 2001

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Selbsorganisierende Systeme

a) Offene Grenzen

b) Erzeugung von Grenzen und Strukturen

c) Attraktive und dispersive Wechselwirkungen

d) Dynamik, auch kleine Änderungen der Bedingungen geben: 1) stabile Strukturen2) evolvierende Strukturfamilien3) fluktuierende Strukturen 4) Strukturverlust

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Ein einfaches mathematisches Modell

a: zn+1 := zn2 + c

b: z0 = 0

c: c = Konstante

1: Wähle z = x + yi und rechne 1000 Schritte2: Wenn |z| konvergiert, oszilliert oder unterhalb eines

Grenzwerts bleibt, färbe Punkt in x/y-Ebene schwarz3: Wenn |z| explodiert, färbe den Punkt entsprechend der

Zahl der Schritte, nach der z einen Wert > Grenzwerthat, mit Grenzwert > 2.

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Nicht-explosive Verhaltensmuster für einen bestimmten Ausgangswert

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Mandelbrot-Menge

zn+1 = zn2 + z0

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Nicht-explosive Verhaltensmuster für einen bestimmten Ausgangswert

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Periodizität der Attraktiven Zyklen

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Logistische Kurve

xi+1 = r*xi (1-xi)

xi = Population zur Zeit t = i(normiert 0 – 1)xi+1 = Population zur Zeit t = i+1x0 = Population zur Zeit t = 0

r = Wachstum

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Bifurcation

0 1 2 3r

Endw

ert(e

)

0

1

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Bifurcation

J. Gleick, Chaos, Penguin. London 1987

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Natürliche Bifurcation

Y. K. Blossfeldt, Urformen der Kunst, Schirmer/Mosel, München 1994

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Der rote Fleck

J. Gleick, Chaos, Penguin. London 1987

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Laser

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Lorenz Attraktor

J. Gleick, Chaos, Penguin. London 1987

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Organische Attraktoren: Wie man einen Farnwedel zeichnen kann

YE. Haeckel, Kunstformen der Natur, Prestell,

München 1998J. Gleick, Chaos, Penguin. London 1987M. Barnsley: http://www.superfractals.com/pdfs/0703398v1.pdf

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Belusov-Zhabotinsky Reaktiona)b) Nach ca. 2 min:

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Reaktionsschema

-I

II

III

II ist schneller als III

-

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Belousov-Jabotinsky Reaktion: Formulierung

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Bray-Liebhafsky-Reaktion

Rhythmische O2-Entwicklung

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MusterbildungB-Z Reaktion indünner Schicht

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Simulation

Modell: Reaktion gekoppelt mit Diffusion

Ausschnitt aus 12’40“ –Bildvon Belusov-Zhabotinsky Reaktion

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Belusov-Zhabotinsky Reaktion

Ansichten Einsichten Modelle: VW Stiftung 1998

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cAMP-Wellen in Dictyostelium discoideum

Siegert und Weijer, Curr. Biol. 5, 937, 1995

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Lebenszyklus von D. discoideum

Siegert und Weijer, Curr. Biol. 5, 937, 1995

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Mounds

3 Mounds, davon zwei mitbeginnenden Tips

Einzelner Mound(Dunkelfeld)

100 µm

Siegert und Weijer, Curr. Biol. 5, 937, 1995

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Wellen in D. discoideum

25 s 50 s 75 s

900 s 925 s 950 s

Siegert und Weijer, Curr. Biol. 5, 937, 1995

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Auslöser ist cAMP

cAMP

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Eine 5-armige Spirale

Siegert und Weijer, Curr. Biol. 5, 937, 1995

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Wechselwirkung mehrerer Wellen

Siegert und Weijer, Curr. Biol. 5, 937, 1995

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Zellbewegungen innerhalb des Mounds

Siegert und Weijer, Curr. Biol. 5, 937, 1995

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Bis hier 1. Tag (17.4.08)

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Belusov-Zhabotinsky Reaktiona)b) Nach ca. 2 min:

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CircadianeRhythmik

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Übersicht zur Circadianen Rhythmik

• 400 v. Chr.: Androsthenes beschreibt Tag/Nacht-Rhythmik der Blätter (Aufzeichnungen Feldzug Alexander).

• 1700 Ortuis de Meiran beschreibt rhythmische Blattöffnung bei Mimosen, prägt Begriff.

• 1873/1915 Pfeffer zeichnet Blattbewegungen auf und postuliert endogene Rhythmik.

• 1918 Szymanski zeigt, dass bei Tieren Schlaf-Rhythmus auch im Dauerdunkel bestehen bleibt. Später für sehr viele andere metabolische bei fast allen Pro- und Eukaryoten gezeigt.

• 1948 Shropshire/Butler/Borthwick: Phytochrom als Zeitgeber bei Pflanzen, später auch in Algen und vielen Prokaryoten entdeckt.

• Andere Rezeptoren: Blaulichtrezeptor (Cryptochrom) (Tiere, Pflanzen), Melanopsin (Tiere).

• 1971 Konopka/Benzer: period Gen in Drosophila, Transkriptions-/Translations-Feedback-Inhibierung

• Temperaturkompensation

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Lichtkontrolle der Photoperiode

(Melanopsin)

(Rhodopsin)

(Lockley/Gooley, Curr. Biol. 16, R795, 2006)

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Einzelzell-Rhythmik: FibroplastenPer:Luziferase Assay

Welsh et al, Curr. Biol. 14, 2289, 2004

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Lumineszenz-RhythmikvonFibroplasten

Welsh et al, Curr. Biol. 14, 2289, 2004

Per:Luziferase Assay

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Ko/Takahashi: Hum. Mol. Gen. 15, R271, 2006

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Das cyanobakterielle Kai Regulations-System

kaiA kaiB kaiC

DNA

Protein-KomplexIst allgemeiner Transkriptions-

Regulator

RNA

KaiA KaiB KaiC Protein

KaiA2KaiB4KaiC6

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TTO - Modell der Circadianen Rhythmik bei Cyanobakterien

kaiBC

KaiB + KaiCKaiA

KaiA2KaiB4KaiC6

TransciptionalTranslationalOscillations

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Uhr benötigt keine Protein - Synthese

kaiBC-mRNA verschwindet

KaiC-Protein konstant

Phosphorylierungszustand

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Phosphorylierung-dephosphorylierung

von KaiAund Kontrollen durch

KaiA und KaiB ......

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.... reichen aus zur Erzeugung einer circadianen Rhythmik

In vitro: KaiA+ KaiB + KaiC (1 : 1 : 4) + ATP (1 mM)

Nakajima, Science 308, 414, 2006

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Diese Rhythmik ist weitgehend Temperatur – kompensiert .....

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....... und reagiert auf Mutationen in vitro ähnlich wie in vivo

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ATPase Funktion von KaiC

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Chemische Selbstorganisation

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Chlorophyll - Aggregate

R3

Mg

O

N N

N N

H

H

R13R13'

COOR17

R3 = VinylR13 = COOCH3R13.1 = H

R3 = CHOH-CH3R13,R13.1 = H2

Keine Fluoreszenz

IntensiveFluoreszenz

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Nicht-kovalente Wechselwirkungen

Verbindung MW Kp

CH4 16 -162 °CH2O 18 100 °C

C3H4 44 - 42 °CCH3Cl 50 - 24 °CC2H5NH2 43 17 °CCH3CHO 42 21 °CC2H5OH 44 78 °CHCOOH 46 101 °C

Interaktions-energie

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Nicht-kovalente Wechselwirkungen

Anziehend

van der Waals Kräfte

π−π Wechselwirkungen

H-Brücken

Salzbrücken

Metall-Ligandierung

Abstoßend

Sterische Hinderung

Elektrostatische Abstoßung

Entropie

Netto Effekt ergibt sich aus Wechselwirkung untereinanderund Wechselwirkung mit Lösungsmittel

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van der Waals Kräfte

Induzierter Dipol –induzierter Dipol

~0,5 kJ/Mol

H3C H

H CH3

δ+δ-

δ+ δ-

KohlenwasserstoffeLipid-Seitenketten

Dipol – Dipol

~1,2 kJ/Mol

C O

O C

δ-δ+

δ- δ+

H3C

CH3

HHAldehydeWasserAromatische AS - ResteAntiparallele α-Helice

Fe

O

O δ-

δ+

++

Dipol –induzierter Dipol

> 1 kJ/Mol

Wasser – MethanChlorophyll(Mg) - HisHäm(Fe) – SauerstoffNitrogenase

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H-Brücken

Basenpaarung DNA

BChl c,d,e im Chlorosom

Schwarmbildung

C H

N H

O H

OC

C

CO

O

CO

OH

C

O H

O H

O

C

O

C

O H

O H

O

C

O

R R R R

OOH

OH

O

O OH

OH

O

Interaktions-energie

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Beispiele für Grundbausteine für H-Brücken

Kato et al, Angew. Chem. 118, 1159, 2006

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H-Brücken basierte Organisationsformen

Kato et al, Angew. Chem. 118, 1159, 2006

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Bis hier 2. Tag (24.4.08)

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Flache Scheiben stapeln sich

Kato et al, Angew. Chem. 118, 1159, 2006

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Zentrales H-Brücken

Motiv

Kato et al, Angew. Chem. 118, 1159, 2006

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α-Helix

http://www.rcsb.org/pdb/(1IJD, chain B)Viewer: Rasmol oder SPVDownload unter: http://us.expasy.org/spdbv/text/download.htm 2.6

Lys (K)

Ile (I)

Tyr (Y)

Val (V)

Phe (F)

Arg (R)Asp (D)

Thr (T)

Gly (G)

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β-Faltblatt (4BCL)

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Salzbrücken

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A+B-

R NH2

OC

HOR' R NH3

+O

CO

R'-

Salzbrücke (Ionische Bindung)

Mg

δ-

δ+

2+ Mg1.5+

HN

N

HN

N

0,5+

Vollständig

Partiell2- 2-

Salzbrücke

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Metall-Ligand Wechselwirkungen

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A+B-

R NH2

OC

HOR' R NH3

+O

CO

R'-

Salzbrücke (Ionische Bindung)

Mg

δ-

δ+

2+ Mg1.5+

HN

N

HN

N

0,5+

Vollständig

Partiell2- 2-

Salzbrücke

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BChl - Koordination

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Sekundärer Ladungstransfer

Mg

δ-

δ+

2+ Mg1.5+

HN

N

HN

N

0,5+

Partiell2- 2-

Mg2+ Mg2+

N

N

HN

N

0,5+

2,5- 2,5-

L LH

0,5+sekundär

tertiär

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π-π - Wechselwirkungen

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Aromatische Aminosäuren in C-Phycocyanin

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Chl a – Aggregate in CH2Cl2

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BChl – Interaktionen in LH2

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BChl – Interaktionen in Reaktionszentrum

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Aggregate strukturieren

Protein

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Dielekrizitätskonstante bestimmt Interaktionsenergien

E ~ d-1 ε-1

d = Abstandε = Dielektrizitätskonstante

ε(Wasser) = 80ε(Vakuum) = 1ε(Protein) = 2 (hydrophober Kern)

– 20 (hydrophile Bereiche)

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(Hydro)phobe Bindung

Minimierung von Oberflächen Randeffekt verringertEntropie

Je kleiner „Rand“, destogrößer Entropie

Beispiele: Wasser in ÖlÖl in WasserMembranbindungHydrophober Kern in ProteinenPoren in Membranen

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Phytyl - Interaktionen

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Passform

Schlüssel – Schloss ZeolitheI3- in StärkePhenole in CyclodextrinenManche Enzyme

Angepasstes Schlüssel – Schloss

Paar

Enzyme – SubstratKofaktorenProtein-Protein

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Hexokinase

Loop

α-Helix

β-Faltblatt

ohne Glc (1IG8) mit Glc (1BDG)

Glc

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Untersuchungsmethoden

NMR <0,5 nm Natürliche Sonden (1H, 13C)(Nuclear magnetic resonance)

FRET 2 nm Fluoreszenzmarker(Fluorescence resonant energy transfer)

ESR 7,5 nm Spin label (Nitroxide)(Electron magnetic resonance)

AFM 5 nm Nicht erforderlich(Atomic force microscopy)

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Chlorophyll a – Aggregate

Kontakt –Verschiebungen

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Ringstrom

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Kopplungen

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Beispiele für spezifische Kopplungen

121-CH3

21-CH3

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Bakteriochlorophyll c - Aggregate

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Modell der BChl c -

Aggregate

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Chlorosomen - Modell

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Fluoreszenz-Modulation in Komplexen

Erkennung

Fluoreszenz-Modulation

ATP: Verstärkte FluoreszenzGTP: Verminderte Fluoreszenz

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Lichtsammler - Einheiten

Absorption: Bipyridyl3

Energietransfer auf Eu3+

Fluoreszenz: Eu3+

Absorption: PE, PC, APC

Energietransfer auf LCM

Fluoreszenz: LCM

PE

PC

APC

LCM

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Elektron-Elektron Doppelresonanz

Originaldaten Korrigiert

FourierTransform

Banham et al., Angew. Chem. Intl. Ed. 118, 1074, 2006

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4-Helix Bündel

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MOP Design

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BChl MOPs

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Minimal - Maquette

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Fluoreszierende dichte Packung

Bhongale und Hsu, Angew. Chem. Intl. Ed. 118, 1432, 2006

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Reaktivitätskontrolle durch Formeffekt

Käss et al., Angew. Chem. Intl. Ed. 118, 107, 2006

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L-Serin Oktamere

Nanita und Cooks, Angew. Chem. Intl. Ed. 118, 568, 2006

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D/L-Serin: Stereoselektion bei Aggregation

Octamer-Menge

absolut

korrigiert

Nanita und Cooks, Angew. Chem. Intl. Ed. 118, 568, 2006

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Amplifizierung von Enantiomerenüberschuss

Nanita und Cooks, Angew. Chem. Intl. Ed. 118, 568, 2006

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Chirales und achirales Monomer

Aggregation in Dodekan bei c > 1,8 * 10-4 M

Ajayaghosh et al, Angew. Chem. 118, 1159, 2006

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Chirale Übetragung

Links-Schraube Rechts SupercoilVon Links-SchraubeAjayaghosh et al, Angew. Chem. 118, 1159, 2006

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ProteinfaltungKinetisches ParadoxonExperiment: Protein faltet in <1 sAbschätzung: a) Kleines Protein

b) 4 Konformationen pro Peptidc) 1 ps / Konformer‘test‘

Zahl der Konformere: 2100 = 1030

Benötigte Zeit zum Durchsuchen: 1018 s = 31 Mrd JahreAlter des Weltalls: ca. 12 Mrd Jahre

C

R

NC

O

C

R'

N

H

H

C

O

HN

C

O

C

R'

N

H

C

C

R

NC

O

C

N

R'

H

C

O

C

R

NC

O

C

N

R'

H

C

OH

RC

O

H

φ ψ

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Faltung von Phycocyanin

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Verpacken von DNA mit

kationischenAmphiphilen

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Bola – Amphiphile: Hydrophobe Wechselwirkungen

Kato et al, Angew. Chem. 118, 1159, 2006

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Anwendungsbeispiele

Eindimensionale Leiter (organische Drähte)

Zweidimensionale Leiter

Photonische Materialien (spannungsabhängige Absorption)

Transfektion

Katalysatoren

Flüssigkristalle (Displays, Photoleiter, Speicher)

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Musterbildung von Amphiphilen

Prinzip der Amphiphil-Doppelschicht

Kunitake, Angew. Chem. 104, 692, 1992

Ausprägungen

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Synthese-Muster

Kunitake, Angew. Chem. 104, 692, 1992

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Beispiel für Musterbildungen

Kunitake, Angew. Chem. 104, 692, 1992

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Weitere Beispiele für Musterbildungen

Kunitake, Angew. Chem. 104, 692, 1992

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Überstrukturen

Kunitake, Angew. Chem. 104, 692, 1992

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Energielandschaft der Proteine

Das Experiment: Spektrales LochbrennenLöchern verbreitern sich, auch bei

tiefsten Temperaturen

Hypothese: Konformationsgebirge mit hierachischerAbstufung der Energiebarrieren

Lini

enbr

eite

Denaturiertes Phycocyanin Natives Phycocyanin