Vorlesung Biologie für Mediziner (Bölker FB17) Aufbau und Funktion des Zellkerns

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Vorlesung Biologie für Mediziner (Bölker FB17) Aufbau und Funktion des Zellkerns Organisation und Funktion eukaryotischer Gene Zellteilung (Mitose) Keimzellbildung (Meiose) Rekombination und Genkartierung. Vorlesung Biologie für Mediziner (Bölker FB17). Zellteilung und Zellzyklus - PowerPoint PPT Presentation

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1) Aufbau und Funktion des Zellkerns

2) Organisation und Funktion eukaryotischer Gene

3) Zellteilung (Mitose)

4) Keimzellbildung (Meiose)

5) Rekombination und Genkartierung

Vorlesung Biologie für Mediziner (Bölker FB17)

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Zellteilung und Zellzyklus

Bei der Vermehrung von Zellen wechseln sich

Zellwachstum (kontinuierlich) und Zell-

teilung (diskontinuierlich) ab

Den Ablauf der Zellteilung kann man als einen

wiederkehrenden zyklischen Prozeß

betrachten (Zellzyklus)

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Zellzyklus

Mikroskopisch kann man die Interphase

(Chromosomen nicht sichtbar) von der Mitose

(Chromosomen sichtbar) unterscheiden

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Interphase

(G0-Phase: Ruhezustand teilungsinaktiver Zellen)

G1-Phase: Vorbereitung zur DNA-Replikation

S-Phase: DNA-Synthese

G2-Phase: Vorbereitung der Mitose

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Eukaryotischer Zellzyklus

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Mitose

Nur während der Mitose sind die Chromosomen

sichtbar

Damit eine Aufteilung erfolgen kann, werden

die Chromosomen durch Kondensation stark

verkürzt

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Mitosestadien

Prophase: Kondensation der ChromosomenAbbau der Kernhülle

Metaphase: Aufbau des Spindelapparates

Anaphase: Trennung der Chromatiden

Telophase: Entspiralisierung der Chromo-somen Wiederaufbau der Kernhülle

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Interphase

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Prophase

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Späte Prophase

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Metaphase

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Aufbau des Spindelapparates

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Anaphase

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Telophase

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Film zur Mitose(siehe online-media)

Zur Anzeige wird der QuickTime™ Dekompressor “Graphics”

benötigt.

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Mitosis-promoting factor (MPF)

Mitotische Zellen enthalten eine aktive

Komponente, die in den Kernen mitotische

Veränderungen (Auflösung der Kernhülle,

Chromosomenkondensierung) hervorruft.

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Nachweis von MPF(Mitosis promoting factor)

MitotischeZelle

G1-PhaseZelle

MitotischeZelle

S-PhaseZelle

MitotischeZelle

G2-PhaseZelle

Kondensierteschromatin

Kondensierteschromatin

Kondensierteschromatin

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Cycline

Während der Zellteilung wird eine zyklische

Veränderung der Konzentration bestimm-

ter Proteine (Cycline) beobachtet

Die MPF-Aktivität korreliert mit der beob-

achteten Cyclin-Menge

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Aufstieg und Fall von MPF

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Cyclin-abhängige Kinasen (Cdks)

MPF ist ein Komplex aus einer Cyclin-

abhängigen Kinase (Cdk) und einem Cyclin

Cdk ist eine Proteinkinase, die andere Proteine

phosphoryliert

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Cyclin-abhängige Kinase (Cdk)

mitoticcyclin

cyclin-dependent kinase

Cdc2

MPF

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Kontrollpunkte (checkpoints)

Der Zellzyklus wird an bestimmten Kontrollpunktenvon verschiedenen Cdk-Cyclin-Komplexengesteuert:

Eintritt in die S-Phase (Start)

Eintritt in die Mitose

Beendigung der Mitose (Metaphase-Anaphase Übergang)

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Initiation der DNA-Replikation

Start der Mitose Metaphase-Anaphase-Übergang

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G1-Cyclin

Cdk

Start-Kinase

Initiation der DNA-Replikation

Initiation der Mitose

mitotisches Cyclin

M-phase-promoting factor

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Regulation von Start in eukaryotischenZellen

Durch Phosphorylierung des Rb (Retinoblastoma)-

Proteins kommt es zur Freisetzung eines

Transkriptionsfaktors, der Gene für die Initiation

des Zellzyklus aktiviert

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aktives Rb-Protein

inaktiver Transkriptionsfaktor

Zielgen Zielgen

Transkription

aktiver Transkriptionsfaktor

inaktivesphosphoryliertesRb-Protein

G0-Zelle Teilungsaktive Zelle

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Onkogene und Tumorsuppressorgene

Die Teilungsaktivität wird von Proto-Onkogenen

und Tumorsuppressorgenen gesteuert

Zu einer unkontrollierten Vermehrung kommt es,

wenn entweder beide Kopien des Tumor-

suppressors defekt sind oder

eine dominante Mutation in einem Proto-Onkogen

eine Hyperaktivierung des Zellzyklus bewirkt

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NormaleZellteilung

Zwei Kopien eines Tumor-suppressor-Gens

Zwei Kopien eines Proto-Onkogens

ZellzyklusKontroll-System

AUSWIRKUNG:

Kontrolle des Zellzyklus

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NormaleZellteilung

UnkontrollierteZellteilung

Mutation eines der beidenProto-Onkogene führt zur Hyperaktivierung (Onkogen)

Zwei Kopien eines Proto-Onkogens

ZellzyklusKontroll-System

AUSWIRKUNG:

Zwei Kopien eines Tumor-suppressor-Gens

Tumorsuppressor

Kontrolle des Zellzyklus

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NormaleZellteilung

UnkontrollierteZellteilung

UnkontrollierteZellteilung

Mutation eines der beidenProto-Onkogene führt zur Hyperaktivierung (Onkogen)

Beide Kopien des Tumor-

suppressors inaktiviert

Zwei Kopien eines Proto-Onkogens

ZellzyklusKontroll-System

AUSWIRKUNG:

Zwei Kopien eines Tumor-suppressor-Gens

Tumorsuppressor

Zwei Kopien eines Proto-Onkogens

Kontrolle des Zellzyklus

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Meiose

Bei der Keimzellbildung kommt es in der Meiose

zu einer Reduktion der Chromosomensätze

Die Meiose besteht aus einer Reduktionsteilung

(Meiose I) und einer anschließenden Mitose

(Meiose II)

Aus einer diploiden Ausgangszelle entstehen

vier haploide Keimzellen

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Drei nicht-homologeChromosomen

Drei Paare homologerChromosomen

Eine Kopie des genetischen Materials aufgeteilt auf

Chromosomen

Zwei Kopien des genetischen Materials

aufgeteilt auf Chromosomen

Haploid (1N) Diploid (2N)

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Meiose

In der ersten meiotischen Teilung (Reduktions-

teilung) lagern sich die homologen Chromosomen

aneinander und bilden den synaptonemalen

Komplex

Dies geschieht während der Prophase, die

sehr lange dauert und in verschiedene Stadien

eingeteilt wird

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Leptotän

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Zygotän

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Pachytän

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Diplotän

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Diakinese

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Film zur Meiose(siehe online-media)

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Synaptonemaler Komplex

Die Zusammenlagerung der homologen

Chromosomen erfolgt im synaptonemalen

Komplex, der sich während der Prophase der

Meiose I bildet

Im synaptonemalen Komplex kommt es zu

Chromosomenbrüchen, die zur Ausbildung von

Crossing over-Strukturen (Chiasmata) führen

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Synaptonemaler Komplex

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Chiasmata

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Interchromosomale Rekombination

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Chiasma„Crossover“

Chiasma„Crossover“

Intrachromosomale Rekombination

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A

A b

b

a

a

B

B

Intrachromosomale Rekombination

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Drosophila melanogaster

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Thomas Hunt Morgan

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Einheit der Rekombinationsfrequenz

A B C D E

1 cM (centiMorgan) entspricht 1 % Rekombination

42 cM

28 cM20 cM5 cM 3 cM

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Stammbaumanalyse

D/- D/d

D/dD/d

D/d D/-

d/dd/d d/dD/- D/- D/- D/- D/-

D/-D/-

? ? ? ? ?

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D

d

„Variable number tandem repeats (VNTR)“

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Kartierung mit Hilfe von DNA-Markern

d DD/d d/dD/D

Sonde

Restriktionsfragment-Längenpolymorphismus (RFLP)

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D/- D/d

D/dD/d

D/d D/-

d/dd/d d/dD/- D/- D/- D/- D/-

D/-D/-

Kartierung mit Hilfe von DNA-Markern

D/d D/d

D/d

RFLP-Muster