Sachverzeichnis. Die fettgedruckten Zahlen behandeln das betreffende Gebiet eingehender; die

mit, * versehenen Zahlen deuten auf eine Abbildung hin.

Abbau des Chlorophylls 63. Amphigastrien 137. abdichtende Wirkung des Calciums 116. Amplitudenpräparate 20. Abendstellung der Chloroplasten 68*,69. Amylenhydrat-Pyridin-Wirkung auf Acridinorange 45, 46, 47, 72, 16iiff., 195, Zellen 161*, 162*.

196. Analyse der Neutralrotfärbung 146ff. -,Eigenschaften 165, 166*. Analyse des Zelltodes 112, 113, 115, 156, -,Färbung von Mikroorganismen 172, 157, 158, 165ff.

173, 174*, 175, 176. Anaphase 59*. -,Färbung, Theorie 170, 171, 172. Anchusa officinalis 73*, 87. -, Färbung toter Zellen 168, 169, 170, - italica 73, 75*.

171, 172, 173, 174*, 175, 176. anodische Farbstoffe 130, 131*, 132, ·-, Fluoreszenzfarbe 165ff., 195. 176ff., 193. -, Indikatoreigenschaften 166. - Fluorochrome 146, 176ff., 199, 200. -, intraplasmatische Konzentration anekrotischeDiffusionszentrenbeiMoos-

170. blättchen 90*. -,Konzentration und Eigenfarbe 165. AnsammlungvonFluorochromenander ·-, Konzentration und Fluoreszenzfarbe transpirierenden Pflanzenoberfläche

165, 166. 204*, 205*, 206*, 207*, 208*. -, Strukturformel 166*. Anthoceros 61. -, Vita1färbung von Bakterien 175,176. Anthocyan 116ff. Äsculin 198. Anthocyanfärbung und Alter von Kron-Ätherwirkung auf die Plasmaviskosi~ät blättern 119.

40. antikline Membranen 202ff. äußere Plasmagrenzschicht 110*, lll, Apostrophe 69*.

113. Apparat zur fluoroskopischen Unter· Agapanthus umbellatus 61, 186. suchung des Transpirationsstromes Agar-Agar 95. 199*. Aggregation 76*. . Arbeitskern 52. Alkalimetallwirkung 101), 106*, 107,108, Artefaktstrukturen 58.

. 109, 110*, 111 *, 112, 114*, 115. Asphyxieeffekt bei Vitalfärbungen 153, Alkaloide 65, 66*. 154, 156. Alkoholextraktion von Zellen 161: Aspidistra elatior 61, 186. Alkoholfixation 193, 194, 195. Aubrietia 206*, 207. Allium Oepa 6, 7*, 8, 15, 22, 2ß, 24*, Aufblätterung der Chloroplasten 65,

25, 26*, 27*, 28*, 29*, 31, 42, 43, 44, 66*. 46*, 47*, 48*, 56*, 57, 58, 72*, 84, auffallendes Licht 11 *, 12*, 13*, 201 * 85*, 105, 106*, 107, 108, 110*, 111 *, Auflichtfluoreszenzmikroskop 201 *ff. 112, 113, 114*, 115, 117*, 147ff., Auflichtmikroskop 11*, 12*, 13*, 201*. 157ff., 177*ff., 194. Auflockerung der Granastruktur 65,66*.

Alter der Helodea-Blätter und Vital- Auramin 72, 163, 164, 165. färbung 144, 145*, 146. Auraminbase 164, 165.

Altersunterschiede von Spirogyra-Zellen Analyse der Auraminfärbung 163, 164, 121, 122*. 165.

Amikronenlicht 54, 55. Ausflockung des Karyotins 55, 56*, 57*. Ammoniakwirkung auf Zellen 58, 76, Ausschüttelung, Acridinorange 166.

115, 116, 119, 1'20. - von Farbstoffen 133*, 134. Amöboidie der Chloroplasten 67*. -, Neutralrot 133*, 146. - der Leukoplasten 93, 94*. -, Pyronin 158.

216 Sachverzeichnis.

Ausschüttelung, Rhodamin B 183. Austrocknen der Zellen 93. Azur I 42.

Bacterium coli 175, 176. - fluorescens 176. Bakterien 15, 175, 176. - Membranfärbung mit Acridinorange

176. basische Farbstoffe 129, 130, 131 *, 132*,

133*, 136ff., 146, 193, 199. -, Fluorochrome 152, 159, 163, 165, 199

202. Baulipoide 48, 161 *, 162*. Beeinflussung der Chloroplastenteilung

64*. - des Öffnungszustandes der Stomata

120, 121. Beleuchtungsarten beim Mikroskopieren

10, ll *, 12*, 13*. Beobachtung des Öffnungszustandes der

Stomata 88. Berberin, Fluoreszenz 20, 202ff. Berberinrhodanid 207*, 208*, 209*. Berberinsulfat 198, 202ff. Berberis vulgaris 20. Berechnung des Plasmolysegrades 103. Bestimmung des isoelektrischen Punk-

tes 192ff. - der mittleren doppelseitigen Erst-

passagezeit 41 *, 42, 43. - des osmotischen Wertes 97ff., 100ff. - des Plasmolysegrades 101, 102, 103*. Beta vulgaris forma rubra l16. Bewegung der Chloroplasten 68*, 69*. Binnenplasma 53. bizentrischer Kondensor 13. Blasenzellen der Epidermis 51. Blattkannen von Nepenthes 210*, 2II*. Blattmeristem von Tradescantia virgi-

nica 53, 59, 60. Blaulichtfluoreszenzmikroskop 17, 18,

19*, 47, 175. Bodenbakterien 176. Boraginoideen 73*, 74*, 75*, 87*. Brassica oleracea forma rubra ll8. Brennhaare von Urtica 5, 15, 30. Bromeliaceen 210. Brownsche Molekularbewegung 23, 40,

41 *, 42, 43, 44, 54, 55, 57, 58, llO.

Calcinmwirkung auf das Protoplasma 105, 106*, 107, 110, ll3, ll4, 179*.

Callisia 103. Camellia 71. Chara spec. 35. - baltica 49. - ceratophylla 49. - foetida 49. - fragilis 35, 36*, 49, 53, 54, 55.

Chara rudis 49, 5Q*. Characeen 3, 15, 30, 31, 32*, 33*, 35

36*, 49, 50*, 53, 54*, 55. Catharinea 89*. Chemodinese 33. Chemonastie76. Chloroformwirkung ll6. Chlorophyceen 3. Chlorophyllbildung in Plastiden 67*. Chloroplasten 20, 61 *ff., 186*, 194. Chloroplastenstroma 62, 65, 67*. Chloroplasten, Struktur 61 *ff., 186*. -,Vitalfärbung mit Rhodamin B 186*. Chondriosomen 24, 25, 26, 27*, 28*, 29,

49, 66, 184. Chromatin 54, 161. Chromatophoren 37*, 38*, 39, 40, 61ff. -, Konsistenz bei "Spirogyra 38*. Ohrornatwirkung auf Chloroplasten 63,

64. Ohramomeren 48*, 49. Chromonema 45, 46*, 47*, 48*, 49, 53. chromophore Gruppe 129, 130. Chromosomen 59*, 194. Closterium 63. Commelina coelestis 140*. Conjugaten 3. Cucurbita Pepo 25, 37, 2llff. Cucurbitaceen 5, 15, 25, 37, 211. Cynoglossum coelostinum 75, 87.

Dahlia variabilis 52*. Daucus c_arota ll7, ll8*. Dauerzone des Helodea-Blattes 145*. Deckglasabschluß, Wirkung auf Zellen

153, 154. Delphinium ll9. Deplasmolyse 83, 84, 120, 121 *, 122*,

123, 124*. Desorganisation des Protoplasmas

durch Harnstoff II3, 122. - des Zellkerns 53, 54*, 55, 56*. destilliertes Wasser, Giftigkeit 4. -, Herstellung 4, 5. Diachrome 128ff. Diastrophe 69*. diffuse Farbstoffspeicherung 137, 138,

146ff., 185. Diffusion 127, 196. - imMembransystem96, 97,196, 197*,

198. - im Protoplasma 196, 198. - von Salzen in Membranen 96, 97,

196, 197*, 198. Diffusionsrichtung und Plasmolyseort

89*, 90*, 91, 96*. Diffusionstheorie von Sachs 213. disperse Phasen im Zellkern 54, 55, 56,

57*.

Sachverzeichnis. 217

Dispersitätsänderung des Karyotins 54, 55, 56*, 57*.

Dispersität.serhöhung im Zellkern 54, 55, 56, 57*.

Dissoziation und PH -Wert, Acridin­orange 166.

-, Auramin 163. - von Farbstofflösungen 129, 130, 132,

133. -, Methylenblau 157. -, Neutralrot 146, 147, 154. -, Pyronin 158. Dissoziation, Kaliumfluoreszein 181, 182 -, Rhodamin B 183. -, Toluidinblau 194. Dochtmethode 2ll, 212*. Doppelbrechung, Chloroplasten 62, 63*. -, Myelinfiguren 108, 109*. -, Zellketn 62. -, Zytoplasma 62. Dracaena deremensis 61*, 186*. Drosera rotundifolia 76*. DruckstromtheorievonMünch 213,214. Drüsen (Nepenthes-Kanne) 210*. Drüsenhaare 142*. Dunkelfeldanalyse von Zellen 25, 26*. Dunkelfeldbeleuchtung 10, 11 *, 12*,

13*, 14, 15, 25, 26*, 31, 32, 34, 35, 36, 44*, 45, 46, 47*, 53, 54, 55, 56, 57*, 84, 85*, 148.

Dunkelfeldkondensor 13*, 14, 15, 34. Dunkelfeldprojektion 83. durchfallendes Licht 10, 11*, 12*, 13*. Durchstechen des Plasmaleibes während

der Plasmolyse ll7, ll8*.

Echeveria 140. Echium italicum 75, 87*. --:- vulgare 87. eckige Plasmolyseform 86. Eigenfluoreszenz des Protoplasmas 20. - der Schleimzellen 20. einseitige Plasmolyse 89*, 90*, 91 *, 92*,

96*. Eintrittsgeschwindigkeit der Plasmolyse

125, 126*. Eisenhämatoxylin 58. Eisessigwirkung auf Zellen 116. Eiweißkomponenten der Chloroplasten

62, 194. Eiweißkristalle 50*; 51. ektozyklische Siebröhren 213. elektive Vitalfärbung 139*, 140*, 141 *,

142*, 143*, 144*, 145*, 146. elektrische Ladung der· Eiweißkörper

169, 192ff. - -der Zellmembran 154, 155, 167. - - der Zellen des wachsenden

Helodea-Blattes 146.

Elektroadsorption 113 128, 129, 130, 131*, 132*, 133, 148*ff., 193*, 194, 195.

- und Fluoreszenz des Auramins 163, 164, 165.

Elektrohistologie 192ff. Elektrolytwirkung auf das Protoplasma

55ff., 106, 106*, 107, 108, 109, 110* . 111 *, 112, 113, ll4*, ll5, ll6. ,

elektroneutrale Farbstoffe 130, 183ff. Elektrozytologie 192ff. Empfindlichkeit des fluoreszenz-

optischen Nachweises von Sub­stanzen 16.

Endosmose 120*, 121*, 122*, 123, 124*. Endplasmolyse 122, 123, 124. Entladungspunkt der Zellmembran 154,

167. Entlüftungsapparat 7, 8*, 9. Entmischung der Kernphasen 54, 55,

56*, 57*., 58. - der Lipoide im Protoplasma 161 *,

162*. entozyklische Siebröhren 213. Entquellung des Zellkernes 53. Episcia 205*. Erdalkalimetallwirkung 105, 106*, 107,

110, 116. Ergrünen der Plastiden 66, 67*. Erhaltung der Semipermeabilität nach

Durchstechung des Plasmaleibes ll7, 118*.

Erkennung wundgeschädigter Zellen 61*, 90*, 91*, ll4*, 150*.

Erregerlichtfilter für Fluoreszenzmikro­skope 16*, 17, 18, 19*.

Erstpassage, doppel-und einseitige 41*. Erythrosin 58, 176, 177*, 178*, 179*,

180*, 181*. Erythrosinwirkung auf Zellen 176, 177*,

178*, 179*, 180*, 181*. etiolierte Plastiden 66, 67*. ]fuphorbia Gerardiana 142. Euphosdeckglas 18. Exosmose 98, 100, 103, 116, 118, 121,

150*, 151, 156. experimentelle Zytologie 23. extrafaszikuläre Komponente des Tran­

spirationsstromes 200, 201*, 202* 203*, 204*, 205*, 206*, 207.

extrafaszikulärer Transpirationsstrom 198ff.

extrafaszikuläre Wasserleitung 200ff. Extraktion der Lipoide aus Zellen 161. extraplasmatischer Raum 1ll.

Fadenkerne 49, 50*. Färbbarkeit fixierter Helodea-Blätter

145.

218 Sachverzeichnis.

färbungsanalytische Bestimmung des isoelektrischen Punktes 192ff.

Farbbase 130, 133*. -, Neutralrot 133*, 147ff., 152*, 153*, -, Pyronin 158ff., 162*. farbiges Licht (Mikroskopie) 12, 62, 186. Farbsäure 130. Farbstoffe, Bindung, chemische 128. -, -, elektrostatische 128. -, -durch Gerbstoff 128, 139*, 140*,

141*, 157. -, - durch Löslichkeit 128. -,chemische Eigenschaften 129, 130. -,Dissoziation 129, 130, 13}*, 132*,

133*. -, Eigenschaften und Untersuchungs­

methoden 128, 129, 130, 131 *, 132*, 1'33*, 134.

-, Filterpapierprobe 130, 131 *, 132. -, hydrophile 128. -,lipophile 128. -, Löslichkeit in Lezithin 134. -, Löslichkeit in Lipoiden 133, 134. -, Löslichkeit in Ölsäure 133. -, Löslichkeit in organischen Lösungs-

mitteln 133*, 134. -, optische Eigenschaften 128, 129. Farbstoffabgabe vitalgefärbter Zellen

(Neutralrot) 150*, 151, 156. Farbstoffanstieg in Gefäßen 198, 199*,

200*. Farbstoffaufnahme 127ff. Farbstoffausbreitung im Filterpapier

131*, 132. Farbstoffkataphorese 132*, 133, 166. Farbstofflösungen, Herstellung ge-

pufferter 134, 135. Farbstoffspeicherung 128, 136ff., Farbumschlag des Anthocyans 118, 119. faszikuläre Komponente des Tran-

spirationsstromes 198, 199*, 200*. - Wasserleitung 198, 199*, 200*, 202,

203*, 205*. Fehlerquellen (Farbstoffanstiegs-

methode) 199. - (Grenzplasmolysemethode) 98, 99*. fester Zellsaft 73*, 74*, 75*, 87*, 88. Fixiergemisch nach Carnoy 60. Fixierung 45, 46, 58, 60, 193, 194. Flankenlage der Chloroplasten 69*. FlockungskUrve des Karyotins 56, 57*. florale Nektarien 142. Fluoreszeinkalium 181, 182*, 183, 196,

197*, 198, 212. Fluoreszenz 15ff., 129ff., 131, 133, 134,

146ff., 196ff., 199ff. -, Acridinorange 165, 166. -, Auramin 163, 164, 165. -, Chlorophyll 19, 20, 203. -, Neutralrot 152*, 153*.

Fluoreszenz, primäre 19, 20. -,Rhodamin B 183, 184*. -, sekundäre 20. Fluoreszenzerregung 16, 17, 18, 19, 20. Fluoreszenzindikatoren, Auramin 163,

164. -, Neutralrot 146, 147. -, Pyronin 158, 159. Fluoreszenzmikroskopie 15, 16*, 17, 18,

19*, 20, 47, 63, 129, 11)2' 153, 159, 161, 162*, 164, 165, 166, 167, 168, 172, 173, 174*, 175, 176, 181, 182*, 183, 184*, 195, 196ff., 201 *ff.

fluoreszenzmikroskopische Analyse der Acridinorangefärbung 165ff.

- Analyse der Auraminfärbung 164, 165.

- - der Kaliumfluoreszeinfärbung 181.

- -- der Neutralrotfärbung 152*, 153* - - der Pyroninfärbung 158ff. - - der Rhodamin B-Färbung 184. fluoreszenzoptisch-mikrochemischer

Nachweis des Salzweges 208, 209*, 210.

- -submikroskopischer Poren 207*, 208*.

Fluorochrome 47, 48, 129, 146ff., 176, 177, 195ff., 199ff.

-,basische 47. -,saure 48. Fluorochromierung 20, 47, 48, 129,146ff. - der Kernmembran 48, 160, 184. Fluorochromierung des Zellkernes 45, 4 7,

48, 160, 164, 167, 173, 182, 183. fluoroskopische Analyse der extra­

faszikulären Wasserleitung 200, 20 l * 202*, 203*, 204*, 205*, 206*.

- -der faszikulären Wasserleitung 198, 199*, 200*, 211*.

- - der Siebröhrenfunktion 21lff. - -der Wasserleitung 198ff. Formänderung der Plastiden 68*, 69,

93, 94*. Fruchtfleischzellen 6, 15, 71. Fugenwandlage der Chloroplasten 69*.

Galium Mollugo 136, 137. Gelatine 95*, 193*, 196, 197*. Gelatine-Benzol-Modell 162, 163. Gelatine, isoelektrischer Punkt 193*. Gelauflage-Plasmolysierverfahren 94,

95*, 96*, 97. Gelkern 54ff. GE>lteil des Zellkerns 54*ff. Gentiana verrui 6. Gerbst()ffe ll8, 138, 139*, 140*, 141*,

157 .. Gerbstoffgehalt und Farbstoffspeiche­

rung 138ff., 157.

Sachverzeichllis. 219

Gerbstoffidioplasten 1 40*. Gerbstoffnachweis 118, 139*, 140*, 141* Giftwirkung des Kaliumrhodanids 111 *,

ll2, 113. Glitschbewegungen 30, 31, 34. Granader Chloroplasten 61 *, 62, 63, 65,

67*, 186*. gramnegative Bakterien 175. grampositive Bakterien 176. Grasblätter 200. Grenzplasmolyse 97, 98, 99.

Haare 5, 15, 25, 30, 31, 32*, 37, 50*, 51, 142*, 204*, 205*, 206*, 207*.

Haftvermögen des Protoplasten an der Membran 85*, 86*, 88*.

Raptogenmembran 36*, 54. Harnstoffpermeabilität 120, J 21 *, 122*

123, 124. - ungleich alter Spirogyrazellen 121,

122*. - von Zellen verschiedener Funktion

120, 121*. Harnstoffwirkung an Drosera-Tenta-

keln 76. Hechtsehe Fäden 84, 85*. Hefe 3, 157, 158, 173, 174*, 175*. -,lebende und tote Zellen 157, 158,

173, 174*, 175. -,Vitalfärbung mit Acridinorange

173, 174*, 175*. -, Vitalfärbung mit Methylenblau 157,

158. Hellfeldanalyse lebender und toter

Zellen 23, 24*, 25. Hellfeldmikroskopie !Off. Helodea canadensis 4, 30, 31, 33, 63, 64,

66, 67*, 91 *, 136, 145*, 186, 194. - densa 4, 30, 31, 33, 46, 62, 64*, 65,

66*, 95*, 96*, 97, 144, 145, 186, 196, 197*, 198.

Helxine Soleirolii 202*, 203*, 204*, 205*, 208*.

Hemerocallis flava 124. Hemmung der Itappenplasmolyse durch

Ca 110. Herstellung eines Anthocyanauszuges

118. Hilfsmikroskop (Phasenkontrastein­

richtung) 21 *. histologische Färbung, Theorie 168, 192,

193*, 194. homogene Chloroplasten 61. - Kerne 45, 46, 60. Hordeum vulgare 5, 15, 45. Hyacinthus 71. Hydathoden 142. Hydrocharis mor8U8 ranae 4, 15, 30, 138. Hydrocleis nymphoides 143, 144*.

Hydrophilie 128, 147, 166. Hydropoten 143*, 144*.

lmbibitionstheorie von Sachs 201,202. Immersionsöl für Fluoreszenzmikro-

skopie 19. Impatiens parviflora 140, 141*, 200. Impermeabilität isolierter Tonoplasten

116, 117*. - der Kutikula 89, 90*, 91, 98, 99*. - der Membran für Plasmolytika 90,

91, 92*, 93, 98, 99*. Impfnadel zum Isolieren von Hefezellen

175*. Indifferenzstreifen 33*, 35. Indikatorfarbstoffe 118,· 119, 120, 130,

133*, 134, 146, 147, 154, 158, 163, 166.

Infiltrationsverfahren 5, 7. 8, 9. innere Plasmagrenzschicht 110*, 111 *,

113. Internodialzellen der Characeen 3, 32,

33*, 35, 49, 53, 54, 55. Intrabilität 57, 58, 85, 10liff., 179, 181. intrazelluläre Konzentration von Vital-

farben 128, 129. -· Myelinfiguren 108, 109, 111. inverser Transpirationsstrom 211. Ionenwirkung 105ff. irreversibler Plasmatod 171, 172. irreversible Strukturstatik des Proto-

plasmas 171. isoelektrische Zone 192, 193*, 194, 195,

196. isoelektrischer Punkt 158, 160, 161, 169,

192, 193*, 194, 195, 196. - -, Bestimmung mit einem Farb-

stoffpaar 192, 193*, 194, 195. - - der Chloroplasten 194. - ---;- der Chromosomen 194. - - fixierter Zellbestandteile 192,

193*, 194, 195, 196. - -der Gelatine 193*. - -des Karyotins 194. - -der Kernbestandteile 194, 195. - - der Kernspindel 194. - -der Nukleolen 194. - -des Zytoplasmas 194. isolierte Kerne 54*, 55. Isolierung von Zellen und Zellflächen 5,

6, 7. - von Zellsafträumen 116, 117*. - von Tonoplasten 116, 117*.

Janusgrün 25.

Kaliumfluoreszein 48, 181, 182*, 183, 196, 197*, 198, 212.

Kaliumoxalat-Wirkung auf Zellen 113. Kaliumrhodanid 107, 108, 111*, 112,

113, 208, 209.

220 Sachverzeichnis.

Kaliumsalzwirkung auf das Protoplasma 55ff., im;, J06*, 107, 108, 109, no*, lll *, ll2, ll3, ll4, ll5, 177*, 178*, 179*, 180*, 181*.

Kannenstiel (NPpenthes) 2ll*. Kapillaranalyse 130, 131 *, 132, 163,

165, 199. Kappenbildung der Membran bei Oedo­

gonium 92*. Kappenplasmolyse 57, 109, llO*, 1ll,

ll2, ll3, ll4*, ll5, 178*, 185. Kapselfärbung (Bakterien) 176. Kardioidkondensor 13. Karminessigsäurefärbung 60. Karotinkristalle ll8*. Kartoffel 83*. Karyolymphe 45, 47, 48, 49, 54, 55, 57,

182, 18:!. Karyoptyse ll2, ll5. Karyotin 45, 47*, 48*, 54, 55, 56, 57,

161, 167, 182, 183, 194. Kataphorese 132*, 133, 146, 163, 166,

181, 183. Kataphoreseapparat 132*· kataphoretische Untersuchung von

Farblösungen 132*, 133. kathodische Farbstoffe 129, 130, 131*,

132, 133*, l36ff., 148, 193. Keimmyzel von Phycomyces 172, 173. Kern 23, 24*, 25, 26*, 27*, 29*, 36, 37,

38, 45ff., IIO*, ll1*, 160, 164, 167, 173, 180, 182*, 183, 194.

Kernfärbung mit Karminessigsäure .50. Kernformänderungen 51*, 52, 53. Kernformwechsel in Schließzellen 52*. Kernfragmentation 49. Kerngerüstsubstanz 45ff. Kerngrundsubstanz 45ff. Kernmembran 46, 47*, 48*, 49, 54*,

56*, llO*, ll2, ll5, 161, 165,.}66, 184, 185.

Kernquellung 58, 110*, lll*, 179*, 180. Kernretikulum 45, 46*, 47*, 48*, 58. Kernrillen 46*, 48*, 49. Kernspindel194. Kerntasche 23, 31, 32*, 51*. Kernteilung 59*, 60. Kernverflüssigung 56, 57*, 58, IIO, 111,

. ll2. Kernverlagerung nacli Zentrifugierung

37*, 38, 39. Koagulation des. Zellkernes 47*, 54ff. Koffeinspeicherung und Permeabilität

138, 139*, 140, 141. Kohäsionstheorie 201. Kokainwirkung auf Chloroplasten 65,66. Kolloidgehalt des Zellsaftes 73*, 74*,

75*, 87*, 88. Konkavplasmolyse 86*,106*, 107, 177*,

179*, 180*, 181*.

Konvexplasmolyse 86*, 88*, 106*, 107, llO*, lll, ll4*, ll5, 177*, 178*, 180.

Konzentrationseffekt (Acridinorange) 161i, 166, 167, 168, 195.

Kopulation bei Phycomyces 172, 173. Kortikalplasma 33, 35. Krampfplasmolyse 86*, 88*, 89. Kreuzanalyse nach Liesegang 131 *, 132. kristalline Farbstoffspeicherung 136,

157. Kritik der Fixationsstrukturen 58, 59. Krümelspeicherung 137, 138, 157. Kühlung des Lichtes bei Fluoreszenz-

mikroskopen 16*, 17, 18, 19*. Kultur junger Blätter Tradescantia

virginica 60. Kupferwirkung auf die Plasmaviskosität

40. Kutikula des Helodea-Blattes 145. kutikuläre Transpiration 204*, 205*,

206*, 207. Kutikularhörnchen der Stomata 204*,

207*, 208*.

Ladung der Chloroplasten 194. - der Eiweißkörper 192, 193*, 194,

195, 196. - der Kernbestandteile 47, 48, 194. Lamellenstruktur der Chloroplasten 63,

66*. Lamium purpureum 124. latentes Leben 1'71. Lebendbeobachtung der Kernteilung

59*, 60. - der Zellteilung 59, 60. lebende und tote Zellen 23ff., l65ff.,

182*, 183. Lebermoose 4, 137. • Leitfähigkeit der Zellwand 96, 97, 196,

197*, 198, 20lff. Leitung organischer Substanzen 2llff. Lemna trisulca 69*. Leukomethylenblau 145. Leukoplasten 25, ~6, 28*, 94*. Lichtfilter für fluoroskopisrhe Unter-

suchungen 200. Lichtquellen für Dunkelfeldbeleuchtung

14. - für Fluoreszenzmikroskopie 16*, 17,

18. 19*. - für Hellfeldbeleuchtung 12. Lichtwirkung auf Chromatophoren 65,

66*, 68*, 69*. - auf vitalgefärbte Zellen 153, 163. Ligustrum vulgare 71. Lipoide in Chloroplasten 62, 67*, 186*. - in Protoplasma und Kernmembran

48, 152, 153, 161*, 162* - im Zellsaft 185*. Lipoidgehalt der Grana 186*.

Sachverzeichnis. 221

Lipoidlöslichkeit (RhodanrinB) 183,185* Lipoidnachweis nach Czapek 161 *, 162*. Lipophilie von Farbstoffen 128, 133*,

134, 147, 161, 162*, 163, 166, 183. Löslichkeit von Farbstoffen 133*, 134,

146, 147. Lophocolea bidentata 137. Lycopsis arvensis 75, 87. lyotrope Anionenreihe 107, 108.

Mechanik der Stoffwanderung in Sieb· röhren 213.

mechanische Reizung des Zellkernes 53. Meeresalgen 44. M elampyrum nemorosum 50*. Membran als Leitbahn 196, 197*, 201,

202, 203*, 204*, 205*, 206*, 207*, 208*, 209*, 210*.

Membranfärbung 148*ff., 164-ff. Meniskusfaktor 102, 103. Meristem 70*, 194. Mertensia sibirica 73. Mesembryanthemum cristallinum 30, 31,

32*, 51*. Mesophylll40*, 141 *, 186,208, 209*, 210. Mesophyllzellen, Isolierung 6. Mesoplasma llO*, ll2. Messung des pn-Wertes 135. - der Plasmolysezeit 87. - des Transpirationsstromes 200. - der Zytoplasmaströmung 33, 34, 35. Metaphase 59*. methodische Auswertung der Acridin­

orange-Färbung 169, 170. Methylenblau 72, 136, 145, lii7, 158. Methylenblaufärbung lebender und toter

Hefez!Jllen 157, 158. Mikrokultur vitalgefärbter Hefe 174,

175*, 176. mikroskopische Untersuchungsmetho­

den 10ff. Mikrosomen 23, 25, 26, 28*, 29, 31, 34,

36, llO. mikrotopographische Verteilung der

kutikulären Transpiration 204*, 205*, 206*, 207*, 208*.

Mittelrippenphänomen bei Helodea, 197. Mittelwertbestimmung 35. mittlere doppelseitige Erstpassagezeit

41*, 42 43. mittlerer Fehler einer Differenz 35. - - des Mittelwertes 35. Mnittm splendens 89, 90*, 92*, 93-. Modellversuch zur Farbstoffspeicherung

in Zellmembranen 155. Mohrrübe 117, 118*. Moosblättchen 62, 89ff., 137. Moosprotonema 3. Morgenstellung der Chloroplasten 68*,

69.

Mougeotia 62, 63*, 68*. Mucor 31. Myelinfiguren 108*, 109*, 111, 153, 156,

161 *, 162*, 185.

Nachweis des Salztransportes in den Membranen 95*, 96, 97, 208, 209*, 210.

Nachweisempfindlichkeit von Fluoro-ehromen 129.

- von Diaehromen 128, 129. Nebenzellen 139*, 141*. negativ einachsige Doppelbrechung der

Chromatophoren 62, 63*. negativer Plasmolyseort 89*, 90*, 91*,

92*, 96*, 98, 99*. nekrobiotische Zustände 171. nekrotische Diffusionszentren an Moos-

blättchen 90*, 91. Nekrose des Zellkerns 47*, 54*ff. Nektarien 142. Nepenthes 210*, 211*. Neubildung der Plasmagrenzschicht 113,

ll4. Neutralrot 49, 58, 70*, 72*, 73*, 74*,

75*, ll2, 113, 131, 133*, 136, 137, 138, 140*, 141 *, 142*, 143*, 144*, 145 *' 146ff.

-,Eigenschaften 146. -, Färbung des toten Protoplasten 156,

157. -, Lipophilie der Farbbase 155. -, Membranfärbung 148ff, 151, 156. -, Niederschlagsbildung im Zellsaft

112, 113. -, Theorie der Färbung 154, 155, 156. - und Vakuolenkontraktion 72*, 73*,

74*, 75*. - Vakuolenfärbung 148*ff. Neutralrotbase, Speicherung 152*, 153*. Neutralrotspeicherung und Gerbstoff-

gehalt 138, 139*, 140*, 141*. Nidularium 210. Nikotinwirkung auf Chloroplasten 65,

66*. Nitella 32, 33*, 49. - mucronata 49. Nonnea rosea 75. Normalintrabilität 107, 112. Nukleolus 27*, 46*, 47*, 48*, 51*, 52,

56*, 167, 194. Nymphoides peltata 143.

Oedogonium 92*. Ölimmersion 12. Okularsperrfilter für Fluoreszenzmikro­

skopie 16*, 17, 18, 19*. oligodynamische Schädigung 4. optischer Nachweis der Stoffaufnahme

126ff.

222 Sachverzeichnis.

Orchis latifolia 94*. - maculata 94. osmotisches Gleichgewicht 98, 99, 100,

104, 125, 126*. osmotischer Wasseraustritt 83*. - Wert 97ff., 121, 122, 123, 124. Oxalatschläuche 140. oxypyrentrisulfosaures Natrium 199,

200*' 202ff.

Paphiopedilum venustum ll9. Paraboloidkondensor 13*. Paraffinöl als Einbettungsmedium 5, 20,

24, 154. -, Wirkung aufvitalgefärbte Zellen 154. Parastrophe 69*. pathologische Intrabilitätserhöhung

l09ff., 115, 116. - Permeabilitätserhöhung 98, 115, 116. Pelargonium zonale 119. perfekte Plasmolyse 122. Permeabilität 85, 116ff., 127, 181. - der Kutikula des Helodea-Blattes

145, 146. - der Kutikula des Moosblattes 90*. - für .Alkalien 118 119, 120. - für Eisenchlorid 118. - für Harnstoff 120ff. - für Koffein 139. - lebender und toter Zellen 116, 118. Permeation, .Alkohol 44. - Natriumchlorid 115. Pflanzenanatomie 1, 2, 206. PH·Wert und Dissoziation von Farb­

stoffen 129, 130, 132, 163, 166. ·- und Ladung der Eiweißkörper 192,

193*, 194, 195, 196. - und Löslichkeit der Farben 133*,

134. - und Speicherung von Vitalfarben

148*ff., 157, 158ff., 163ff., 165ff., 181 ff.

- und Wanderung im Gewebe 198. Phaeophyceen 3. Phasenkontrastmikroskop 20, 21*, 22,

27*, 28*, 29*, 48*, 49, 59*. Phasenkontrastbild, Chondriosomen

27*, 28*, 29. -, Chromosomen 59*. -, Kern 48*, 49. -, Kernmembran 49*. -, Kernteilung 59*. -,lebende und tote Zellen 27*, 28*,

29*. -, Leukaplasten 28*. -,Nukleolen 48*, 49. -, Mikrosomen 28*, 29. -,Zytoplasma 28*, 29*. Phasenkontrastkondensor 21 *. Phasenkontrastobjektive 21 *, 22, 27, 28.

Phasenkontrastverfahren 20, 21 *, 22, 27*, 28*, 29*, 48*, 49, 59*.

Phasenpräparate 20, 21, 27. Phasealus multiflorus 206*. - vulgaris 20i Phenylurethan, Wirkung auf Chloro-

plasten 65, 66. Phosphatide 85. Phosphoreszenz 16. Photodinese 33. photodynamische Wirkung von Farb­

stoffen 170. Phototaxis der Chromatophoren 68*,

69*. Phy~Comyces Blakesleeanus 31, 172, 173. physiologische Pflanzenanatomie 2. - Ungleichheit bei morphologiseher

Gleichheit 2, 142, 143, 144. Pikrinsäure 46, 58. Pilzhyphen 3, 30, 31. Pilzmyzelien 15, 31, 47, 172, 173. Plasmaausfluß 35, 36*, 53. Plasni.agrenzschirhten 30, 36, 85, 101iff.,

ll7*, 118, 127. Plasmakappen IIO*, 111, ll2, 114*. Plasmakorrektur (Plasmometrie) 10:1. Plasmakugeln 35, 36*, 53, 54, 55. Plasmalemma 110*, 179, 181. Plasmaquellung 110*, 111 *, ll2, ll3,

ll4*, ll5, 178*, 179, 180, 181. Plasmastränge 23, 25, 26, 28*, 30, 31,

32*, 34, 37. Plasmaströmung 15, 23, 24, 25, 30, 31,

32*, 33*, 34, 35, 39, 51, 52, 97, 112, 138, 148, 177, 186.

---, Stimulation durch Plasmolyse 97. Plasmaviskosität 39, 40, 41 *, 42, 43, 44. Plasmazungen 108, 109. Plasmazustände 170, 171, 172. Plasmolyse 66, 74, 83ff., 97, 101iff.,

116ff., 137, 139*, 153*, 176, 177*, 178*, 179*, 180*, 181*, 184*.

- und .Alkaloidvakuolisation der Chloroplasten 66.

-, Bakterien 176. -, KCNS 107, 1ll*, 112. -, Morphologie 83ff. -, vitalgefärbte Zellen 112, 137, 153*,

176ff., 184. Plasmolyseendgrad 125, 126*. Plasmolyseform 73*, 74*, 81i, 86*, 87*,

88*, 89, 105, 106*, 107, IIO, lll, ll5, 145*, 177*, 178*, 179*, 180*, 181*.

Plasmolysegrad 100ff., 122, 123, 124*, 125, 126*.

Plasmolyseintrabilität 107, ll2, l1:3, ll4, 177.

Plasmolyseort 88*, 89*, 90, 91 *, 92*, 96*.

Sachverzeichnis. 223

Plasmolysepermeabilität 120. Plasmolysesystrophe 96*, 97. Plasmolyseverlauf 83ff., 125, 126*. Plasmolysezeit Sö, 86, 87, 107, 115. plasmolytische Beeiuflussung der Plasti-

den 66, 93, 94*. plasmometrische Grundgleichung 100,

122. - Methode zur. Bestimmung des os­

motischen Wertes 100*, 101 *, 102, 103*, 104.

- Methode zur Messung der Permea-bilität 122, 123, 124*, 125, 126*.

plasmometrisches Partialverfahren 124 * - Totalverfahren 124*. Plasmoptyse 44*. Plasmoschise 179*, 180. Plastidengrenzschicht 65, 66*. Plastidenverlagerung nach Zentri-

fugierung 37*, 38*, 39. Platzen des Kernes 112, 115. Platzen des Tonoplasten 112, 113. Polarisationsmikroskop 62, 63*, 108,

109*. Polarität. der Stoffbewegung in Sieb-

röhren 213. Polarität der Zelle 92*. Pollenschlauch 44. Porenanhäufungen, submikroskopische

207*, 208*. positiver Plasmolyseort 89*, 90*, 91 *,

92*, 96*. Präparation lebender Pflanzenzellen

und Gewebe 3ff. -, oberseitige Epidermis der Zwiebel-

schuppe von Allium Oepa 6, 7*, 8*. primäre Grana 67*. - Zytoplasmaströmung 30, 31, 33, 34. Primärfluoreszenz des Chlorophylls 19,

20, 203. Primula sinensis 200*. Protoplasmatik I. Pulmonaria ofjicinalis 73, 119. - stiriaca 73, 74*. Pyrenoide 68*. Pyronin 48, löS, 159, 160, ]61*, 162*,

163.

qualitative Analyse der Permeabilität 120ff.

quantitative Analyse der Permeabilität 122ff.

- Auswertung der Plasmolyse 97ff., 122ff.

Quarzkondensor 19*. Quellung der Karyolymphe 55, 56. - des Kerns 55ff., 110*, 111*, 112, ll5. - des Protoplasmas 110*, ll1*, ll2,

ll5.

Randvakuolen, Kern 54*, 55. Ranunculus ficaria 120, 121*, 206, 207. - repens 206*, 207. Reduktion der Chloroplasten 63. Reduktionsvermögen der Zellen für

Methylenblau 145. Reizplasmolyse 74*. relative Viskosität 39, 40. Restitution nach Zentrifugierung 37*,

38*, 39. Reversibilität der Cytorrhyse 93. - d& Kappenplasmolyse llO. - der Vakuolenkontraktion 72, 149,

150*, 154. - der Vakuolisation von Chloroplasten

66. reversible Strukturänderung des Kerns

53. Rhizoiden 15, 49, 50*. - von Ohara 49, 50*. Rhodamin B 24, 33, 67, 183, 184*, 185*,

186*. Rhodanidwirkung 107, 108, 111 *, ll2. Rhodophyceen 3. Rhodulinorange 165. Rhoeo discolor 83, 84, 98, 99*. Riesenchloroplasten 64*, 65. Rotationsströmung des Protoplasmas

30, 31, 32, 33*, 34, 35, 97. rote Beete 116. Rotkohl ll8. Rotkohlanthocyan 118. Rouschals Siebröhrenexperiment 211,

212*, 213, 214. Rubidiumwirkung auf Chloroplasten

64*, 65. Ruhekern 4ö, 46*, 47*, 48*, 49*ff. Rumex patientia 120, 142*.

Saccharom1Jces cerevisiae 157, 158, 173, 1'74*, 175.

saccharophylle Pflanzen 65. Säurefuchsin 193*, 194. Säure- und Alkaliwirkung auf Antho-

cyane 118, ll!l, 120. Säurewirkung auf Zellen ll9, 120. Salvinia auriculata 103, 124, 125, 126*. Salzintrabilität 105ff. Salzwirkung auf den Zellkern 55ff .,11 0*,

1ll*. Saugkraft 121. Saugschuppen der Bromeliaceen 210*. saure Farbstoffe 130, 131*, 132, 176ff.

]93, 199. - Fluorochrome 146, 176ff., 199ff. Scheinplasmolyse 74*, 180*, 181*. Scheintod 171. Schlierenmethode 83*. Schließzellen 52*, 88*, 89, 120, 121 *,

139*. 141*, 142.

224 Sachverzeichnis.

Schnitte, Herstellung 5, 7ff. Sehnmachers Siebröhrenexperiment

2ll, 212, 213, 214. Schwammparenchym 140, 141*, 209*. Scrophulariaceen 50. Secale cereale 5. sekundäre Zytoplasmaströmung 30, 31,

33, 34. Selaginella 64. - serpens 68*. Sempervivum Pomelii = S. Verloti 138,

139*, 140. Siebröhren 2llff. Sinapis alba 5, 15. Solblasen, Kern 55. Solkern 45, 54, 56, ES •. Solteil des Kernes 54*, 55. Sol- und Gelteilbildung im Zellsaft 73*,

74*, 75*. Solzustand des Kernes 45, 54, 56, 57, 58 Speicherung 128. Speicherungsvermögen des Protoplasten

und Stoffwanderung 197, 198. Spirogyra 15, 37*, 38*, 39, 40, 44, 63,

86, 100, 103, ll8, 121, 122*, 124. Spontankontraktion der Vakuole 7Iff. Sporen von Phycomyces 172. springbrunnenartige Rotation des Zyto-

plasmas 30, 31. Sprossungswachstum der Hefe 175. Stärke in etiolierten Plastiden 67*. - in Schließzellen 52*. Stärkeabbau beim Ergrünen der Plasti-

den 67*. Stammlösungen für Puffer 135. Standardabweichung 35. Staubfadenhaare, Tradescantia virginica

5, 15, 30, 31, 32*, 59*. Stoffaufnahme 105ff. Stoffaufnahme durch die Blattober­

fläche 210*, 211 *. Stofftransport 196ff. Stoffwanderung und Alter des Gewebes

197, 198. - in den T..eitbahnen 198ff. - in Siebröhren 21 Iff. - von Zelle zu Zelle 196, 197*, 198. Stokessehe Regel 16. Stomata 52*, 88*, 89, 120, 121*, 141*,

142, 200, 204, 208*. Strahlenga~, .Auflicht-Dunkelfeld 13*. -, Fluoreszenzmikroskop 16*. -, Hell- und Dunkelfeldbeleuchtung

12*, 13*. -, Paraboloidkondensor 13*. Streifigwerden der Chloroplasten 65. Strömungsindikatoren 196ff. Stroma der Chloroplasten 62ff. Stromafäden zwischen Chloroplasten

64*.

Strukturänderung der Chloroplasten 63. submikroskopische Poren 204, 205, 207 *

208*. Sudan III 128. Surface precipitation rea.ction 113. Symphoricarpus racemosus 6, 15. Symphytum tuberosum 73*, 87. Synaerese 74, 75. Systrophe 94, 95, 96*, 97.

Teilprotoplasten 85, 86*, 102. Teilvakuolen 76*. ·Tentakeln von Drosera 76*. Thea japonica 71. Theorie der Wasserleitung in Paren-

chymen 201. Thymonukleinsäure 47, 161. Toluidinblau 193*, 194. Tonoplast 110*, 111 *, ll2, 113, 116,

117*, 177, 178*, 179*, 180, 185. Tonoplastenplasmolyse 57, 111*, 112,

113, 114, ll5, 178*, 179*, 180, 185. totes Protoplasma, .Anfärbung mit ka­

thodischen Farbstoffen ll3, 156, 158, 168ff.

Tradescantia albloifm 103. - fluminensis 60, 61*. - virginica 5, 15, 30, 31, 32*, 53, 59*. - zebrina 124. Transpiration 202, 204*, 205*, 206*, 207. Transpirationsstrom 198ff. Trapa natans 143*, 144. Traumatodinese 33. Traumatotaxis, Zellkern 60, 61*. Trennung von Farbstoffgemischen 131 *,

132. Trianea Bogotensis 4, 15, 25, 30, 32, 86*1

138, 157. Trichome 4, 5, 15, 25, 30, \Jl, 32*, 34,

38, 44*, 50*, 51, 59*, 86*, 138, 142*, 157, 204*, 205*, 206*, 207*.

Trichoplasten 138. Triticum vulgare 5, 15, 69, 70*, 71. Tröpfchenspeicherung von Farbstoffen

42, 136, 137, 138, 141*, 142*, 157, 185*.

Tüpfelschließhäute 149.

Ultramikroskop 13. ffitraviolettlicht-Fluoreszenzmikro­

!lkopie 17; 18, 19*. ffitraviolettwirkung auf vitalgefärbte

Zellen 153, 163. Umschlag des Rotkohlanthocyans l18. Umstimmung des Wauderweges für

Kaliumfluoreszein 198. Unterscheidung basischer und saurer

Farbstoffe 130, 131 *, 132*, 133.

Sachverzeichnis. 225

Unterscheidung toten und lebenden Protoplasmas mit Vitalfarbstoffen 156, 157, 158, 16l'iff., 173, 174*, 175, 176.

Uranglas 19*. Urtica spec. 5, 15, 30, 208. -- urens 208.

Vallisneria spec. 31, 33, 123, 124, 126*. - spiralis 123, 124, ] 26*. Vakuolen in Nukleolen 51*, 52*. Vakuolenentwicklung 69, 70*, 71. Vakuolenfärbung, Acridinorange 167. -, Neutralrot l48*ff. Vakuolisation der Chloroplasten 65, 66*. Vakuolenkontraktion 58, 71, 72*, 73*,

74*, 75*, 76*, 148*, 149, 150, 151, 152*, 154, 157, 164, 165, 167, 177.

-,Alter der Zellen 71. -, Neutralrotfärbung 72*, 73*, 74*,

75*, 148*, 149, 150, 151, 152*. - und Wundreiz 72, 75. Vakuolensystem 69ff. Vakuolenzerklüftung 76*. Vakuum-Infiltrationsmethode (V.I.M.)

8*, 9. Verfestigung des Zellsaftes 73*, 74*, 75*,

87*. Verlust der Semipermeabilität IIG, ll8,

179*, 180*, 181*. Vermehrung der Grana 67*. Veronica beccabunga 142. Verteilung der Lipoide im Chloroplasten

186*. Vicia faba 52, 88*. Viola spec. 6, ll9, 208, 209*. - lutea var. grandiflora 6. - tricolor 208, 209*. Viskosität 39ff. Viskositätsmessung 39, 40, 41 *, 42, 4-3, 44. Vitalfärbung 15, 4-2, 45, 47, 70, 72ff.,

112, 126ff. -, Acridinorange 16l'iff. - der Chondriosomen 24, 25, 184, 185. - der Chloroplasten 186. -, Erythrosin 176. 177*, 178*, 179*,

180*, 181 *. -, Grundlagen l27ff. - des Helodea-Blattes 144, 14-5*, 146. - der Hydropaten 143*, 144*. -, Kaliumfluoreszein 181, 182*, 181. -, des Kernes 45, 46, 47, 48, 160, 161,

164, 165, 167, 173, I76ff. -- der Kernmembran 48, 161, 184, 185. --,methodische Auswertung 12fi, l27ff. ---,Methylenblau 157, ]58. -, Neutralrot 70*, 72*ff., 112, 136ff.,

146ff. -, Pyronin 158ff. -,Rhodamin B 183, 184*, 185*, 186*.

Strugger, Praktikum, 2. Auf!.

Vitalfärbung des Tonoplasten 185. - des Zellsaftes 136ff. Vitalfarbstoffe 128ff. Volummessung an Zellen 100*, 101*,

102, 103*. Vor-Rücklage der Chloroplasten 69*. Vriesea spec. 210*.

Wachstumszone des Helodea-Blattes 145*.

Wärmefilter 14. Wasserblätter von Salvinia 103, 124-,

125, 126*. Wasserleitung 198ff. Wasserlinse 69*. Wasserpermeabilität 125, 126*. Wirkung des ungefärbten Mediums auf

gefärbte Zellen 149, 150. Wundreizwirkung 30, 33, 54, 58, 60, 61 *,

75, 87, 91 *, 92, 98, 107, ll4*, 115, 150*, 180.

Wurzelepidermis 138. Wurzelhaare 4, 5, 15, 25, 30, 31, 32, 34-,

44*, 45, 137, 138, 157. Wurzelspitze fi9, 70*, 194, 19.3.

Zebrina pendula 141 *. Zellkern 23ff., 4l'iff., llOff., l64ff. Zellsaft 40, 41, 42, 43, 44, 69ff., 70, 74*,

87*, 88, 100, ll9, 120, 164, 165, 167, 185*.

Zellsaftinkluse 7 4 *. Zellsaftkonzentration 97ff. Zellsaftreaktion ll9, 120. Zellsaftviskosität 40ff. Zellschrumpfelung 93. Zellteilung 59*, GO. Zentrifugeninfiltrationsmethode

(Z.I.M.) 9. Zentrifugierung von Zellen 36, 37*, 38*,

39, 40. Zirkulationsbewegung des Zytoplasmas

30, 31, 32*, 34. zweifarbige Indikatoren 130. Zwergchloroplasten 64*, 65. Zwiebelschuppe von Allium Oepa 6ff.,

23ff., 5fi, 57, 58, 72*, 84, 8.5*, 105, 106*, 107, 108, 109, llO*, ll1*, ll2, ll3, ll4*, 115, 116, 117*, 147ff., 157ff., 177ff.

Zytologie 1, 2. Zytomorplwlogie 23. Zytoplasma 23ff. Zytoplasmakonfiguration 23ff. Zytoplasmalipoide 1fi1*, 162*. Zytoplasmaverlagerung nach Zentri-

fugierung 37*, 38*, 39, 40. Zytorrhyse '92*, 93. Zysternen, Bromeliaceen 210.

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