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Amt der Steiermärkischen Landesregierung Bezirkshauptmannschaft Murau - Veterinärreferat

Wildtiere und ihre Bedeutung

als Überträger von Zoonosen

Armin Deutz

Amtstierärztliche

Weiterbildung, 14.11.2013

Zoonosen - Definitionen

„Sämtliche Krankheiten bzw. Infektionen, die auf natürlichem Weg direkt oder indirekt zwischen Tieren und Menschen übertragen werden können“

Kontaktzoonosen: hervorgerufen durch Tierkontakte

Foodborne Diseases: hervorgerufen durch Genuss von Lebensmittel oder Wasser

One World – One Health

62% aller Erreger von Human-Infektionen sind Zoonosen

54% aller Erreger von Haustier-Infektionen können Wildtiere infizieren

44% aller Erreger von Human-Infektionen können Wildtiere infizieren

? % aller Erreger von Wildtier-Infektionen können Haustiere (Nutztiere) infizieren ?

Tollwutfälle – Europa, 2009, FLI

Haustiere Wildtiere

Rabies – Bulletin - Europe

(FLI, 2010) Tollwut 2013: Griechenland, Kroatien, Niederlande, Polen, Rumänien, Ungarn, Slowakische Republik

Welche Wildtiere?

Wildwiederkäuer

Wildschwein

Hasenartige

Nagetiere

Raubsäuger inkl. Neozoen

Insektenfresser, Fledertiere

Wildvögel (Zugvögel!)

(Arthropoda), Exoten, …

Risikogruppen - Wildtierzoonosen

Jäger, Tierpräparatoren

Landwirte, Tierhalter

Tierärzte

Schlachthofarbeiter

Laborpersonal

Freizeitsportler

Konsumenten, …

YOPIS

(young, old, pregnant, immunosuppressed)

2

Risikofaktoren

Wilddichten

Wildfütterung

Klimawandel

Migrationen, Neozoen

Eroberung neuer Lebensräume („Stadtfüchse“, -“sauen“)

Freilandhaltung von Haustieren, Farmwild

Globalisierung des Handels mit Wildtieren und

Wildtierprodukten

Unwissenheit, fehlende Untersuchungen, …

Übertragungsmöglichkeiten

Beispiel: Zoonosen beim Feldhasen Zoonose Erreger Übertragung

1. Virale Zoonosen

FSME (Metazoonose)

Togaviridae

Zecken

2. Bakterielle Zoonosen

Campylobacteriose

Leptospirose

Brucellose

Tularämie

Borreliose (Metazoonose)

Pseudotuberkulose, Yersiniose

Pasteurellose

Staphylokokkose/-Enterotoxikose

Streptokokkose

Q-Fieber

Chlamydiose

Listeriose

C. jejuni, coli; (lari)

Leptospira spp.

Brucella suis (Biovar 2)

Francisella tularensis

Borrelia burgdorferi

Y. pseudotub., Y. enterocolitica

Pasteurella multocida

Staphylococcus aureus

Streptococcus spp.

Coxiella burnetti

Chlamydia psittaci

Listeria mnocytogenes

LM, SI

K (bes. Urin), SH

K (bes. Wunden)

K, A, blutsaugende Insekten

Zecken

LM (rohes Fleisch?)

K, A

K (Wunden)/LM (Toxine)

K

A, K, (Zecken?)

K, A

LM, (Geonose)

3. Parasitäre Zoonosen

Fasciolose

Toxoplasmose

Fasciola hepatica

Toxoplasma gondii

LM

LM Abkürzungen: A ... Aeosol, K ... Kontakt, LM ... Lebensmittel, SH ... Schleimhaut-, SI ... Schmierinfektion

Zoonosen beim Feldhasen (n = 630), Steiermark

(Deutz u. Hinterdorfer, 1999)

Zoonose n % Pseudotuberkulose Pasteurellose Brucellose (B. suis) Staphylokokkose Streptokokkeninfektion Listeriose Toxoplasmose Tularämie Salmonellose

148 37 35 22

7 5 4 2 1

23,5 5,9 5,6 3,5 1,1 0,8 0,6 0,3 0,2

Pseudotuberkulose

Brucellose

Aktuelle Diskussionen um Wildtierzoonosen

Trichinose (Wildschwein, Marderhund, ..)

Tularämie (Feldhase)

Brucellose (Feldhase, Wildschwein)

EHEC,VTEC, STEC (Wild-Wdk.)

Tuberkulose (Dachs, Rot-/Schwarzwild)

Echinokokkose (Fuchs)

Tollwut (Fuchs, Fledermäuse, ..)

Ehrlichiose und Q-Fieber (Schalenwild)

Chlamydiose, NCD, West-Nile-Virus, Influenza (Vögel)

Dirofilariose (Fuchs?)

Zoonosen-Richtlinie (2003/99/EG)

Kategorie Zoonosen und Zoonoseerreger

A

B

Überwachungspflichtige Zoonosen und Zoonoseerreger

Brucellose, Campylobacteriose, Echinokokkose, Listeriose, Salmonellose,

Trichinellose, Tuberkulose (verursacht durch Mycobacterium bovis),

Verotoxinbildende Escherichia coli

Je nach epidemiologischer Situation überwachungspflichtige Zoonosen und

Zoonoseerreger

1. Virale Zoonosen: Calicivirus, Hepatitis-A-Virus, Influenzavirus, Tollwut und

durch Arthropoden (z. B. Zecken, Stechmücken) übertragene Viren

2. Bakterielle Zoonosen: Borrelliose, Botulismus, Leptospirose, Psittakose,

Tuberkulose (ausgenommen Tuberkulose gem. Abschnitt A), Vibriose, Yersiniose

3. Parasitäre Zoonosen: Anisakiase, Cryptosporidiose, Zystizerkose, Toxoplasmose

3

Motive der Überwachung von Wildkrankheiten / Zoonosen

Wildökologische Motive - Bedrohung von Arten

Landwirtschaftliche - Reservoir Haustierseuchen

Handelspolitische - Nachweis Seuchenfreiheit

Public health Motive - Reservoir für Zoonosen

Schätzung/Erfassung von Populationsgrößen!?

Populations-Parameter

• Dichte

Primäre Populations-Parameter

• Geburtsrate

• Sterberate

• Migrationsraten

Zeitliche Eigenschaften

Räumliche Eigenschaft

“gesund” oder “krank”?

Träger/Ausscheider von Zoonoseerregern sind häufig klinisch vollkommen unauffällig

Paratuberkulose: Zoonose ja/nein?

IKK-Seuchenzug 2006, Niedere Tauern

IKK: auch Zoonose!

2006: Ende Nov. Fliegen auf 2.000m

152 Landwirte

149 Jäger

147 Schlachthofarbeiter

137 Tierärzte

50 Personen als Kontrollgruppe

635 Probanden (untersucht auf 27 Zoonosen)

Untersuchungsstellen: AGES Mödling, Institut für Virologie der UVW, Abt. Med. Parasitologie des Hygieneinstitutes Uni Wien, Hygieneinstitut Graz

Untersuchung prädisponierter Personen

(Deutz et al., 2003)

4

Seroprävalenzen bakterielle Zoonosen (Deutz et al., 2003)

21

3

13

0 00

4

0 0 01

4

0 0 0

3

10

01

3

0 0 0 0 00

5

10

15

20

25

Ch. psittaci Leptospira sp. C. burnetii Brucella sp. F. tularensis

Se

rop

os

itiv

e i

n %

Tierärzte

Landwirte

Schlachthofarbeiter

Jäger

Kontrollgruppe

Borreliose, Ehrlichiose

Borreliose (49% der Jäger pos.!): Erythema chronicum migrans (ca. 70%); Fieber, Gelenks-, Muskel-, Kopf- und Nackenschmerzen, Menin- gitis, Fazialisparesen, Extremitäten- lähmungen, Verhaltensstörungen, kardiale Symptome, Arthritiden (Knie!), Acrodermatitis chronica atrophicans

Ehrlichiose (18% der Jäger pos.!): Fieber, Kopf- u. Rücken- schmerzen, Erbrechen, Nieren- und Leberfunktionsstörungen, Panzytopenie Infektion auch über Blutkontakte?

Viele Zoonosen verlaufen „grippeähnlich“ > hohe Dunkelziffern!

Brucellose (B. suis)

1 seropositiver (1:40) Jäger und 1 Jäger mit Titer von 1:20

Risiko: Schwarzwild- und Feldhasenkontakte

Von 128 untersuchten Stück Schwarzwild

(99 Sera auswertbar) waren 7 (7%) seropositiv Von 630 Feldhasen (Stmk.) gelang bei 35 (5,6%) der

Erregernachweis (B. suis)

Tularämie

Tularämie

In Ö ca. 10 - 15 Humanfälle/Jahr

(hohe Dunkelziffer vermutet!)

Infektionswege: Feldhasenkontakt

(Schleimhautinfektion, aerogen),

Lebensmittel- bzw. Trinkwasserinfektion,

Vektoren (blutsaugende Insekten)

Krankheitsbild: vielfältig, je nach

Eintrittspforte, Infektionsdosis und Erregerstamm:

(ulzero)glandulär, oculär, oropharyngeal, intestinal,

pulmonal, typhoidal

F. tularensis gilt als potenzielle Biowaffe! (Kategorie A)

Tularämie

5 seropositive (3,4%) Jäger und 7 mit Titern < 1:80 (4,7%)

Risiko: Feldhasenkontakte

Bekannte Endemiegebiete in Ostösterreich

Geringe minimale Infektionsdosis

Infektion durch intakte Haut möglich, Aerosole!

Verbreitungsgebiet klimaabhängig, Ausweitung des Endemiegebietes

5

Verstärktes Auftreten der Tularämie bei:

Wintertemperatur über + 0,5 °C

Maitemperatur unter 14 °C

Sommerniederschlag > 180 mm

Jahresniederschlag < 720 mm

Leptospirosen

10 % Jäger 4 % Landwirte 4 % Schlachthofarbeiter 3% Tierärzte seropositiv

Risiko: Schweine-, Schwarz- wild-, Nager- und Feldhasen- und Hundekontakte

Von 108 untersuchten Stück Schwarzwild waren 26 (24%) seropositiv (L. bratislava, grippo- typhosa, icterohämorrhagiae, hardjö)

(Deutz et al., 2002)

Ergebnisse parasitäre Zoonosen

55

34

22

1 0 0

79

48

15

5 30

73

25

17

4 30

67

17

5

11

0

64

2

10

0 0 00

10

20

30

40

50

60

70

80

90

T. gondii T. canis/cati A. suum E. multiloc. E. granulos. F. hepatica

Sero

po

sitiv

e in

%

Tierärzte

Landwirte

Schlachthofarbeiter

Jäger

Kontrollgruppe

E. multilocularis („Fuchsbandwurm“) und

T. spiralis bei Füchsen, Steiermark

pos. Fälleneg. Fälle

Mur

Mürz

( T.s., E.m.)

(Lassnig, 1996; Deutz et al., 1995)

6

Nachuntersuchungen (Echinococcus spp.)

Serologie: von 152 Landwirten/Innen: E. m.: 8 pos./grw. E. g.: 4 pos./grw. (insges. 10 Probanden p/g)

Ultraschall, CT: 3 Probanden (weibl., 37, 43, 49 J.) mit Leberzysten, Bestätigung von Echinokokkenzysten (Serologie: 2 E. m., 1 E. g.)

Toxokarose („Hunde-/Katzenspulwurm“)

48 % Landwirte (ELISA) 34 % Tierärzte 26 % Schlachthofarbeiter 17% Jäger seropositiv („Normalbevölkerung“: 1 - 2%)

Füchse: ca. 50% Spulwurmträger

Risiko: Schmierinfektionen ausgehend von Hund/Katze oder Fuchs, Kontamina- tionen von Gemüsegärten und Kinderspielplätzen (Problem Stadtfüchse?)

© Bayer Animal Health GmbH© Bayer Animal Health GmbH

Okuläre Larva migrans (OLM-Syndrom)

Retinagranulom, Mensch

Larve aus Retinagranulom

Weitere Krank-heitsbilder (z.B. Asthma, Rheuma, Epilepsie) werden als Folge von Toxokara-Infestationen (LMV) vermutet

(DEUTZ et al., 2005)

Odds ratio Toxokarose (Landwirte – Kontrollgruppe)

Landwirte

Kontrollg

total

Seroprä-valenz

Toxocara

positiv

67

1

68

negativ

85

49

134

total

152

50

202

²-Test

Value

df

Significance

Pearson Chi-Square

29,832

1

0,00000

Risk Estimate Value

95% Confidence Interval

Lower

Upper

Odds Ratio

38,624

5,198

286,991

Jäger (Seroprävalenz Westernblot: 17%)

> Odds ratio 9 (= 9faches Risiko)

Durch Arthropoden übertragene Krankheiten/Zoonosen

Babesiose

Borreliose

Ehrlichiose

Filariose

FSME

Leishmaniase

Louping-ill

Rickettsiosen

Tularämie u.v.m. Zoonosen MU 04-12

Durch Arthropoden übertragene Krankheiten

Virus Wirte/Reservoir Zoonose Vorkommen in Europa

FSME-Virus Mäuse, Vögel, Reh-/Rotwild ja fast europaweit

West-Nile-Virus Vögel, Pferde, Frösche, Mäuse ja SK, H, A, Südeuropa

Bluetongue-Virus Wiederkäuer nein fast europaweit

Batai-Virus Wildvögel, Hasenartige, Nagetiere ja Skandinavien, MittelEU

Tahyna-Virus ja A, Tschechien, F

Uukuniemi-Virus ja Norwegen

Eyach-Virus Nagetiere? ja NL, F, Tschechien

Tribec-Virus Kleinnager, Hasenartige ja ?

Lipovnik-Virus ? ja ?

Bahanja-Virus Vögel, Säuger ja Tschechien, Italien,

Österreich, Portugal,

Spanien, Polen Semliki-Forest-

Komplex-Virus

? ja

Lednice-Virus Vögel ?

Sindbis-Virus ja

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Infektionsgefährdete Gebiete werden im Alpenraum größer

Hantavirus-Infektionen in Österreich

(Aberle, 2011)

Hantavirus, Wasserspitzmaus, Murau „Neue Krankheiten“, z.B.WNV-Infektionen

Empfänglich: Vögel, Pferde, Mensch

1999 Raum New York; in den USA ca. 1.000 Tote

ab 2004 in Ungarn (Stamm Lineage 2)

2008 in Österreich bei Vögeln (90% Habichte)

übertragen durch Stechmücken

WNV-Infektionen (783 Fälle, davon EU 226 Fälle, Stand 6.11.2013)

Verbreitung H. marginatum (Krim Kongo Hämorrhagisches Fieber)

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Fuchs als „Indikator“

385 Füchse und 110 Feldhasen:

Tularämie: 7,5% Füchse serologisch und 4,5% Hasen kulturell positiv

Brucellose: 3,1% Füchse serologisch und 2,7% Hasen kulturell positiv

Tularämie/Brucellose: Mandibularlymphknoten von 903 Füchsen kulturell untersucht (2007/08) >> 10 Füchse F. tularensis-, 4 B. suis- und 3 B. microti-pos.

(HÖFLECHNER-PÖLTL, 1999)

(HOFER et al., 2009)

Fuchs als „Indikator“

Trichinella britovi:

1.546 Fuchsköpfe untersucht

(2003/04) > 24 positiv (1,55%)

(KROIS et al., 2005)

Trichinella sp. (Übersichtsarbeit):

Österreichweit insgesamt 5.565 Füchse untersucht >

Nachweise in 31 von 121 Bezirken; Prävalenzen in 12

Bezirken zwischen 0,01 und 2%, in 15 zwischen 2,01

und 5% und in 4 zwischen 5,01 und 9,48%

(DUSCHER et al., 2005)

Fuchs als „Indikator“

Alaria alata (Dunkerscher

Muskelegel), 2,5-6 x 0,5-2 mm,

2 Zwischenwirte (Süßwasser-

schnecke / Amphibien),

paratenischer Wirt Wildschwein

> Zoonose

1.980 Füchse aus Österreich

untersucht > 0,2 – 22,1% positiv

(Duscher, 2011)

Weitere Krankheiten (Seuchen), Fuchs

Staupe (Zusammenhang mit MS?)

Räude > Mensch > „Scheinräude“

Wildfleisch als Infektionsquelle?

• Campylobacteriose

• Salmonellose

• Trichinose

• Brucellose, Tularämie

• Pseudotuberkulose

• Yersiniose

• Botulismus

• Taeniasis

• Verotoxinbildende E. coli, Hepatitis E, ..

Enterohämorrhagische E. coli (EHEC)

Erste Krankheitsfälle 1981/82 in Nordamerika, 1994 weltweit Krankheitsfälle

Hauptinfektionsquellen: Rindfleisch, Rohmilch aber auch Obst, Gemüse, Apfelsaft usw.

Schmierinfektionen durch Mensch- und Tierkontakte

BfR: Risiko Reh- und Rotwild

Infektionsdosis: 10 bis 100 Keime

EHEC (O157 H7) auch in 1,5% heimischer Rohmilchproben nachgewiesen (DEUTZ et al., 1999)

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STEC/EHEC in Gams- und Hirschwürsteln

4 Rückrufaktionen von österr. Wildwürsten im Winter 2011/12

Hepatitis E

Krankheitsbild ähnlich Hep A

BRD: 15% der untersuchten

Wildschweine positiv

Risiko: nicht durchgegarte

Leber!

Symptome: Müdigkeit, Abgeschlagenheit, Kopfschmerzen, Appetitlosigkeit, Gewichtsverlust, Muskel- und Gelenkbeschwerden, Druckgefühl im Oberbauch, Gelbsucht, Dunkelfärbung des Urins, Hellfärbung des Stuhls)

Vorbeugemaßnahmen – Jäger

Einhaltung hygienischer Grundsätze

Trichinenuntersuchung

Keine „Rituale“

Handschuhe beim Aufbrechen

Anfeuchtes des Balges (Abbalgen)

Risiko Rohprodukte

Regelmäßiges Entwurmen von Hunden

Keine rohen Abfälle verfüttern

Reduktion Zeckenbefall

Sektion verdächtiger Tiere, Veränderungen abklären

Information über Risiken, Vorsorgeuntersuchung

Verstärkte Kooperation Human-/Veterinärmedizin

Keine Hysterie!

Bewusstsein für neue Erreger/Krankheiten muss

erhöht werden (Jäger, Tierhalter, TÄ, Behörden,

Untersuchungsstellen), Austausch von Daten

Zoonotisches Potential nicht vergessen

(75% aller neuen Krankheiten sind Zonosen!)

Gezielte Querschnittsuntersuchungen

Systematische Erfassung von Fällen (human/veterinär)

Beiträge zur Ökologie von Erregern, Vektoren und

Zwischenwirten; Einfluss des Klimawandels beachten

Zoonosen sind häufig Medienereignisse!?

Forderungen, Strategien Gute alte Zeit?

Besten Dank für ihre Aufmerksamkeit