Zeitplan fur elnen einsemestrigen Kurs (5 Wo.-Std.)

1) Nahrb6den, Zusammensetzung, Anwendung und Herstellung Kulturgefai3e und ihre Verschliisse Sterilisation a) trockene Heii3luft und b) im gespannten Dampf (Autoklav).

Versuche: I, 1 - 3.

2) Kulturtechnik (1,5; z. T. Demonstration) Anreicherungskulturen (II, 1 und 2) Sterilisation durch Filtration (I, 3c)

3) Erste Auswertung der Anreicherungskulturen: Kolonien (III, 2), mikroskopische Beobachtung, einfache Nachweise. Reinkultur (I, 4 und Abimpfen von Einzelkolonien aus Luftkeim­platten, Plattieren (II, 5a). Anaerobenkultur (II, 5b).

4) Anlage von Reinkulturen nach verschiedenen Methoden (II, 5a - c). Nitrifizierer (Nachweis von NH NH4 +, N02 - und NOa-) Schwefelbakterien Kultur von Thiobacillus aus der Anreicherungs­kultur ansetzen und Saure titrieren. (II, 1).

5) Morphologie und Cytologie der lebenden Mikroorganismenzelle (Agarfilmpraparate mit dem Phasenkontrastmikroskop betrachten) III, 1.

6) Diagnostische Farbungen, Cytochemische Nachweise (III, 3).

7) Einige Methoden zum Bestimmen von Bakterien (IV). Messung von Wachs tum und Saureproduktion in den Kulturen der Thiobacillen.

8) Bakteriophagen Anreicherung, Titerbestimmung (II, 3 und VI, 1) Isolierung von Mutanten (II, 4 abgekiirzt).

9) Methoden zur quantitativen Bakterienbestimmung (V, I, 2 und 5). (Fehlerbestimmungen)

10) Wachs tum und Vermehrung (V, 6).

- 209 -

11) Antibiotica, Desinfektionsmittel (IX, I, 3 u. 5a). (Eine Auswahl an Versuchen)

12) Qualitativer und quantitativer Nachweis von Stoffen mit Mikro­organismen (Niacintest, VIII). Homogenisation und Fraktionierung von Bakterien (XI, 1 und 2) oder Atmung u. Garung (XII, 3).

13) Serologische Methoden (X, 1 - 4).

Die Zahlenangaben verweisen auf die Kapitel dieses Buches.

N amen- und Sachverzeichnis

Absorptionsspektrum 160 Acetobacter 23, 39, 178 Acetoin 95 Achromobacte r 173 Actinomyceten 50 Actinomycin 197 Adenosintriphosphat = ATP 162,

177 Aerobacter 92, 95, 96, 178 Aerobiose 22 Agar 8, 75 Agardiffusionstest 93, 128, 130,

133 Agglutination 147, 153 Ammoniaknachweis 36 Anabaena 88 Anaerobentopf 30, 65 f. Anaerobiose 28 Anreicherung 32 Antibiotica 51, 128, 130, 137 Antigen 146 -, determinante Gruppe 146, 149 Antik6rper 146 Artbegriff 62, 90 Aspergillus 55, 96, 128, 136, 203 Athiohodaceae 47 ff., 77, 98 ff. Atmung 177, 181, 184

, Elektronentransport 177 ff. -, respirator. Quotient 185 - mit Nitrat 172 Ausstrich 80 Autoklav 14 auxotroph 57, 124 Azotobacter 34, 77, 84, 173, 178

Bacillus 12, 14, 33, 77, 80, 81, 83, 84, 85, 86, 95, 96, 128, 136, 173, 178

bactericid 128, 134, 135

Bacteriochlorophyll 47, 98 -, quant. Bestimmung 163 -, Regulation der Synthese 196 Bacteriophagen 56 f., 116 ff.

Reinigung 118 -, Wirtskreis 118 -, Wachstum 119 bacteriostatisch 55, 128, 134,136 Bacteroides 38 Bdellovibrio 85, 122 Beggiatoa 45, 90 BEIJERINCK 32 Beluftung 22 ff. Bergey's Manual 98, 99 Bewegung der Bakterien 90 -, der Cyanophyceen 200 Blaualgen s. Cyanophyceen Blut 6 Botrytis 115 Butyrivibrio 38

Candida 129, 136 Capsid 119 Carotinoide 47, 98, 162, 196 Caseinhydrolysat 4 Caulobacter 40 ff., 77, 84, 90 Cellulose 39, 44 -, abbau 38 CHAMBERLAND 16 Chloramphenicol 139, 143 Chromatium 45, 77, 88, 201 Chromatographie

Aminosauren 170 Zucker 170 Nachweis von Aminosauren 171 Nachweis von Zuckern 171

Chromatophoren 47, 157 Cillobacterium 38 Citronensaure, Produktion von 203

- 211 -

-. Einf1uJ3 auf Garung 184 Clostridium 29. 43 f .• 77. 83. 95 Coenobien 78 Corynebacterium 173 Cyanophyceen 34. 52. 71. 78. 88 -. Anreicherung 200 f. Cytoplasmamembran 142

DELBRUCK 119 Denitrifikation s. Nitratreduktion Desinfektion 51. 54 -. bakteriostat. Effekt 136 Desu1fovibrio 39. 44 f. Dia1yse 169 Dichtegradient fUr Zentrifugation

158 Dosis-Effekt-Kurve 58

Endo-P1atte 93 Enterobacteriaceae 91. 93. 97.

147. 173 Erythrocyten 148. 152 Escherichia coli 1. 29. 57 ff .• 80

81. 82. 84. 85. 92. 93. 97. 106. 108. 117. 114. 119. 122. 129, 135. 136. 140. 173, 178. 189

Essigsaure 48. 91 - bakterien 38 Exoenzyme. EiweiJ3 abbauend 95 -, Starke abbauend 96 Extinktion 160

Farbung nach Gram 81 • von Sporen 83

der Kapse1 84 der GeiJ3e1 84

• der DNS 86 der Reservestoffe 86 nach Lindegren 87

• der metachromatischen Granu-la 87

Fermenter 24 ff. Filter zur Entkeimung 16 - zur Keimzahlung 104 Fixierung 80 f. Fleischextrakt 3 F1uoreszenzfarbung 86 French-Presse 156

fungicid 128 fungistatisch 55, 128

p-Galactosidase 189 Gallionella 42 Garung 91. 184 GeiJ3el 84. 90 Gelatine 9. 75, 95 Generationszeit 112 Gerbsaureabbau 55 ghost 142 Giemsa Farblosung 105 Glucose-6-Phosphat-Bestimmung

181 Gradientenplatte 141 Granula 77. 83. 86 ff.

Hamagglutination. passive 148 -, Hemmungsreaktion 153 Hamolyse 151 Hapten 146 Harnstoffspaltung. enzymatisch

94 Hefeextrakt 4 Hefen 79. 184. 191 Hemmkonzentration. minimale

132. 135 kritische 132

, bactericide Grenzkonzentra­tion 135 wirksame 135

Hemmzone 128. 130, 132 d'HERELLE 56 Hochschichtagar 68 f. Homogenisation d. Bakterien

(Herstellung zellfreier Extrakte) 155

-. mechanisch 155 - 157 -. chemisch 157 Hydrogenomonas 39, 95 Hyphomicrobium 40 ff., 77

Immundiffusion in Agargel nach Ouchterlony 150

Immunologie 146 -. Methoden 147 ff. Impfose 19. 62. 68 Indikatornahrboden 91. 93 Indolnachweis 94

- 212 -

Induktion 95 -, der Enzymsynthese 189, 193

Kapsel 84 Keirn zahlbe stimmung, -, Gesamtkeimzahl 102 ff. -, Lebendkeimzahl 105 ff. Kernaquivalent 86 Klebsiella 92, 93, 96 Knallgasbakterien 39 KOCH, ROBERT 62 Koderverfahren 55 Kohlendioxyd-Fixierung, auto-

troph 1, 5, 35, 36, 39, 41, 45, 47, 52

Kohlenstoffquelle 2 ff., 38, 91 Kolonie 78 Komplement 151 - bindungsreaktion 151 f. Kultur, aerob 22, 63, 64

Oberflachenverfahren 22 submers 23 anaerob 28 ff., 65 ff. kontinuierlich 114

Kulturgefa!3e 10 f., 24

Lactobacillus 49, 77, 124, 167 Lampropedia 77, 78 Lederberg-Stempel 59 Leuconostoc 49, 77, 84, 124 L-Form (large bodies) 140, 141 Lichtstreuungsmessung 107 Lindnersches Tropfchenverfahren

69 f. Lipide 87 Lipolysaccharide 147 Lyse, bakt. 122 Lysehof (Plaque) 116, 118 Lysozym 142

Maisquellwasser 4 Malzextrakt 4 Mandelsaureabbau 193 Membranfilter 16, 104 Metachromasie 87 Mickle-Homogenisator 156 Micrococcus 95, 172, 173 Milchsaurebakterien 1, 5, 28,

48 ff., 77, 91, 167

Minimalmedium 1, 57, 60 f., 190 Morphologie -, der Zelle 78, 78 -, der Kolonie 78, 79 Murein 139, 169 Mutante 57 Mutation 58 Mycobacterium 77, 79, 82, 87,

106, 129, 177 Myxobacteriales 38, 78, 79, 90,

91

Nahrboden, allgemein 1 ff. Minimal fUr coli 190, 60 f.

-, Anaerobier nach Brewer 29 -, Stiirkeagar, Bacillus subtilis

PS 1 34 , Azotobacter 34

Nitrifizierer 35 Thiobacillus thiooxidans 37 Cellulosezersetzer 38 Knallgasbakterien (Kaserer) 40 anorg. Ionen 5 Streptomyceten

- - nach Plotho 10 - - nach Jensen 51 - -, Sojamehl 52 -, Blaualgen 200 -, Citronensiiureproduktion durch

Asp. 203, 205 Hyphomicrobium 41

-, Caulobacter 41 -, Sulfatreduzierer (Baar u. Star-

key) 45 Thiobacillus denitrificans 46 Athiorhodaceae R8A.H 48 Cyanophyceen (nach Hughes) 52 Czapek-Dox 55 zur Anreicherung v. Aspergil­

lus niger 56 -, fUr Niacintest 125 -, mineral. fiir Pseudomonas

putida 194 -, fiir Ureasenachweis

MU 95 -, fUr Coli-Phagen PH 2 - PH 4

117 -, fUr Penicillinproduktion 138

- 213 -

-, Pepton (P) 91 -, fUr Testung (R), Pepton-Glu-

cose-Hefeextrakt 134 -, Testagar I u. II, FPH 129 Negativfarbung 84 Nephelometrie 107 Neurospora 115, 173 Neutralisation 153 Nevskia 42 Niacin 3, 4, 124 Nitrat als N-Quelle 5 -, Nachweis von 36, 97 -, Reduktion von 28, 36, 46, 97,

172 f. Nitrifizierer 35 Nitritnachweis 36, 97, 174 Nitrobacter 35 Nitrosomonas 35 Nostoc 200

OberfHi.chenverfahren 22, 205 Objekttragerkultur 75 Operon 189 Optische Dichte siehe Extinktion Oscillatoria 200, 202 Oxalsaure 204

Pasteur-Effekt 184 Pasteur-Pipette 69 ff. Penicillin, Formel 137

quant. Bestimmung von 133, 134 f. -, Produktion von 137 -, Wirkung von 139, 141 Penicillium 128, 137 Pepton 3 Phasenkontrastmikroskop 73 Phormidium 200, 202 Phosphat, quant. Bestimmung 164 Phosphorylierung,

, oxydative 177 P/O-Quotient 177

, Hemmung 177 . , Substrat-, 184 , lichtabhangig 162

Photometrie 107, 160 f. Photophosphorylierung 162 Phototaxis 54, 200

, Topotaxis 200 -, Phobotaxis 201

pH-Wert 7, 37, 50, 62, 91, 94 136

Pilze 54, 78, 115, 128, 137 Pipetten 12, 21 Pipettiermethode zur Isolierung 70 Plattieren (Ausspateln) 64, 65, 106 Polysaccharide 88, 86, 168 ff. -, als C-Quelle 2, 33 Polystictus (Trametes) 77 Pracipitation 146, 149 -, Hemmung 149 PRINGSHEIM 70 Protein, quant. Bestimmung von,

nach Stickland 110 nach Lowry et al. 110

Proteinsynthese 102, 198 -, Hemmung der 143 -, Messung 110 Proteus 77, 84, 85, 91, 92 ff.,

95, 97, 119, 140, 178 Protoplast 140 Pseudomonas 79, 84, 85, 94, 95,

122, 129, 173, 193 Puromycin 143 Purpurbakterien 47 ff., 53, 77 Pyocyanin 79

Regulation -, der Enzymaktivitat 191 -, der Enzymsynthese 174, 189,

191, 193 Reihenverdiinnungstest 134 Reinkultur 62 ff. Repression 95 Repressor 189 Resistenz, Hitze 14 Reservestoffe 86 Reziprokschiittler 24 Rhodomicrobium 48, 99 Rhodopseudomonas 47 ff., 77, 88,

95, 99 ff., 122 Rhodospirillum 47 ff., 77, 84, 85,

88, 91, 99 if., 122, 142, 157, 162, 166, 196, 20i

Ribi-Homogenisator 157 Ribosomen 143 Riihrsysteme 24 ff. Ruminococcus 38 Rundschiittler 24

- 214 -

Saccharomyces 78, 184, 191 Salmonella 93, 147 -, S-, R-Formen 148 Sarcina 77, 97, 178 Saurebildung 91 Sauerstoff 22, 170, 174, 177 -, Partialdruck von 22, 196 -, Diffusion 22 Schaumbekampfung 26 Schwarmplatte 91 Schwefelbakterien 36, 54 Schwefelwasserstoffbildung 94 Sensibilisierung Serratia 93, 94, 97, 119, 173 Serum 7 Sojameh15, 52 Spatel, zum Plattieren 64, 65 Spharoplasten 123, 140, 142 Spirillum 77, 84, 85, 90 Spirochaeten 90 Sporen 33, 43, 50 f., 54, 77, 83 Spurenelemente 5, 6 Staphylococcus 77, 80, 81, 106,

128, 129, 133, 135, 136 Sterilisation durch Heif3luft 12, 17 -, durch Dampf 13, 17 -, durch Filtration 16, 57 Stichkultur 68, 91 Stickstoff 5, 34, 35, 44, 49, 52, 57 Stopfen 11 Streptococcus 49, 77 Streptomyces 50 ff., 77, 78, 79,

80, 82, 106, 128, 143 Streptomycin 143, 144 Streulicht 107, 161 -, Messung von 107 - 109 Strichtest 128 Succinatdehydrogenase 166 Sulfatreduktion 44 f., 94 Suspension von Bakterien 63 Synchronisation der Zellteilung 113

Taxonomie 90, 98 ff., 101 Teichonsaure 168 Tetracyclin 134 Tetrazoliumsalze in der Cyto-

chemie 88 Th~obacillus1, 36, 173

Thomakammer 102 Threonindehydratase 191 Thylakoide 47, 98, 157 -, Absorptionsspektrum 47, 160,

166, 196 Titerbestimmung 117 Trispuffer 155 Trockengewicht 109 TWORT 56 Tyndallisation 13

Ultraschall155 f. Ureasenachweis 94, 95

Vermehrung 102 VerschlUsse 10 Viren 148, 151, 153 Voges-Proskauer-Reaktion 95 Vollmedium 1

Wachstum 102, 111, 115 Phasen des 111 - 115

-, logarithmisch 111, 113 -, linear 115 WAKSMAN 51 WARBURG 184 Warburg Apparat 163, 175, 181 Wasserstoff 39, 44, 45, 91 Weichagarschichtmethode 116 WINOGRADSKY 32, 53, 70 Wurfgr6f3e (Phagen) 119

Zellwand, Prokaryonten 139, 167 gramposit. Bakterien 167 Isolierung 168 chern. Analyse 170 ff. der Blaualgen 200

Zentrifugation, fraktionierte 157 f., 168 -, Dichtegradient 158 -, Berechnung des Schwerefeldes

160 Zerreiben der Bakterien 155 Ziehl-Neelsen-Farbung 82 Zitronensaure siehe C Zucker, 2, 92, 93, 170 -, Bestimmung von (Anthronme­

thode) 205.

Druck: Offsetdruckerei Julius Beltz, Weinheim/BerJl:straBe

Berichtigungen

s. 118: Zeile 12: ••• 4 mall: 2.

Der auf S. 120 geschilderte Versuch dient der Bestimmung der Geschwindigkeit der Adsorption der Phagen an die Bakterien. Bestimmung der mittleren Wurfgrol3e:

a) E. coli B: 2 ·108/m l in KCN-NahrlOsung; b) Phage T4 : 2· 108/ ml.

2,7 ml a + 0, 3 ml b; 37°C. Nach optimaler Adsorptionszeit (s. 0.) mit KCN-freier NahrlOsung verdtinnen, 1: 104, 1: 10 5

und1:10 6 •

Die verdunnten Ansatze werden bei 37°C bebrtitet und im Ab­stand von je 5 min (5 bis 60 min) aus jeder Verdunnung 0,1 ml plattiert (Titerbestimmung). Die Vermehrung -beginnt mit der Verdtinnung (t = 0). Graphisch den Titeranstieg pro Zeit auf­tragen.

S. 139: Zeile 26: •• • verdtinnen den Uberstand 1 : 2, spater 1: 10.

S. 164: 2. Zeile von unten: 2 ml der Probe statt 5 mI.

DREWS, Mikrobiologisches Praktikum fUr Naturwissenschaftler

t·· ..

"

Jawetz Melnick Adelberg

2., Oberarbeitete und erweiterte Auflage. Nach der 5. amerikanischen Auflage Obersetzt und nach der 6. und 7. amerikanischen Auflage Oberarbeitet und erweitert von Doz. Dr. med. GOnther Maass und Doz. Dr. med. Reiner Thomssen, Hygiene-Institut der Universitat Freiburg i. Brsg.

Mit 192 Abbildungen XII, 748 Seiten Gr.-8°. 1968 Gebunden DM 38,-; US S 9.50

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SPRINGER-VERLAG BERLIN· HEIDELBERG' NEW YORK

Medizinische Mikrobiologie Von Ernest Jawetz, Ph. D., M. D., Professor of Mikro­biology and Chairman, Department of Microbiology, Professor of Microbiology in Medicine and Pediatrics, University of California School of Medicine, San Francisco, Joseph l. Melnick, Ph. D., Professor of Virology and Epidemiology, Baylor University College of Medicine, Houston, Texas, und Edward A. Adelberg, Ph. D., Professor of Microbiology and Chairman, Department of Microbiology, Yale University

Die Autoren haben beabsichtigt, diejenigen Gebiete der medizinischen Mikrobiologie kurz, exakt und in ihrem gegenwartigen Stand darzustellen, die fUr die Infek­tionskrankheiten und ihre Chemotherapie von beson­derer Bedeutung sind. Das Buch wendet sich in erster linie an Medizinstudenten, auBerdem an aile Arzte in Krankenhaus und Praxis. Die Notwendigkeit fOr ein klares Verstandnis der mikro­biologischen Grundtatsachen ist in den letzten Jahren starker geworden, da in Biochemie, Virologie und Chemotherapie sowie auf weiteren, die Medizin beein­flussenden Gebieten bedeutende Entwicklungen statt­gefunden haben. Ein wesentlicher Teil dieses Lehr­buches ist deswegen der Darstellung der Grundlagen gewidmet, wodurch sich das Buch auch fOr die Ein­fOhrung des Studenten in den mikrobiologischen Kurs als brauchbar erweisen wird. FOr die neue Auflage wurde eill Kapitel Ober Virus und Krebs neu geschrieben, und das Kapitel Ober anti­mikrobielle Chemotherapie wurde von Grund auf neu bearbeitet. Die Autoren freuen sich, bei dem Erscheinen der 7. ame­rikanischen Ausgabe von einer spanischen, deutschen, italienischen und griechischen Ausgabe, sowie von der Vorbereitung fOr eine serbokroatische Obersetzung be­richten zu konnen.