ENFERMEDADES DEL CULTIVO DE

SÁBILA (Aloe vera) EN COLOMBIA

Luis Federico Molina

Ingeniero agrónomo

MSc. Fitopatología

•Plagas reportadas

•Resultados de laboratorio

•Brigadas fitosanitarias

•Enfermedades

•Recomendaciones

PLAGAS REPORTADAS

(POTENCIALES) HONGOS

• Alternaria alternata (Da Silva y Singh, 2012).

• Alternaria tenuissima (Chavan y Korekar, 2011).

• Aspergillus verocosa (Ayodele y Ilondu, 2008; Chavan y Korekar, 2011).

• Fusarium oxysporum (Ayodele y Ilondu, 2008; Chavan y Korekar, 2011).

• Fusarium solani (Ji et al., 2007).

• Colletotrichum gloeosporioides (Cedeño et al., 2010).

• Mammeria ehinobotryoides (Ayodele y Ilondu, 2008)

• Nigrospora oryzae (Zhai et al., 2013).

• Plectosphaerella cucumerina (Ayodele y Ilondu, 2008).

• Rhizoctonia sp. (Zunilde et al., 2008).

• Torula herbarium (Ayodele y Ilondu, 2008).

BACTERIAS

• Pectobacterium chrysanthemi (Mandal y Maiti, 2005)

• Dickeya spp., D. dadantii, D. zeae

• D. chrysanthemi bv. chrysanthemi

• D. chrysanthemi bv. parthenii (British Potato Council, 2007)

• Erwinia carotovora var. chrysanthemi

• Erwinia chrysanthemi biovar 3 (Jin et al., 1994; De Laat et al., 1994)

PLAGAS REPORTADAS

(POTENCIALES)

Oomycota Phytophthora capsici (Leah et al., 2012)

Phytium sp.

Nemátodos Meloidogyne incognita

Rotylenchulus reniformis

Ácaros Aceria aloinis = Eriophyes aloinis

Tenuipalpus crassulus

Áfido Aloephagus myersi

Chinche Phenacoccus multicerarri

PLAGAS REPORTADAS

(POTENCIALES)

Brigadas fitosanitarias 2014

Diagnóstico fitosanitario para el levantamiento de la línea base, de

microorganismos plaga asociados al cultivo de sábila, realizado

por la Dirección Técnica de Sanidad Vegetal (DTSV) durante 2014.

Departamentos

Cundinamarca

Tolima

Risaralda

Quindío

Valle del Cauca

Boyacá

Huila

Enfermedades de la sábila (Aloe vera) en Colombia

1. Abrazadera.

2. Chizas.

3. Clorosis.

4. Cochinillas.

5. Costra negra.

6. Entorchamiento.

7. Hormiga arriera.

8. Mancha anillada.

9. Mancha anular café.

10.Mancha de aceite.

11.Mancha rojiza.

12.Marchitez.

13.Mildeo.

14.Nemátodos.

15.Peca negra.

16.Peca roja.

17.Pudrición basal fétida.

18.Pudrición de la raíz.

19.Pudrición húmeda raíz.

20.Punta de ceniza.

21.Raspado foliar.

22.Volcamiento.

23.Pudrición vascular raíz.

Luis Federico Molina

Abrazadera.

Luis Federico Molina

Abrazadera.

Luis Federico Molina

Abrazadera.

Luis Federico Molina

Chizas

Luis Federico Molina

Chizas

Luis Federico Molina

Clorosis

Luis Federico Molina

Cochinillas

Luis Federico Molina

Cochinillas

International Plant Protection Convention

PLAGAS Aloe vera

Luis Federico Molina

Luis Federico Molina

Costra negra

International Plant Protection Convention

RECOMENDACIONES

Luis Federico Molina

Luis Federico Molina

Entorchamiento

International Plant Protection Convention

RECOMENDACIONES

Luis Federico Molina

Luis Federico Molina

Entorchamiento

International Plant Protection Convention

RECOMENDACIONES

Luis Federico Molina

Luis Federico Molina

Entorchamiento

International Plant Protection Convention

RECOMENDACIONES

Luis Federico Molina

Luis Federico Molina

Entorchamiento

Luis Federico Molina

Entorchamiento

Luis Federico Molina

Entorchamiento

International Plant Protection Convention

DIAGNÓSTICO QUINDIO

Luis Federico Molina

Luis Federico Molina

Hormiga arriera

International Plant Protection Convention

PLAGAS Aloe vera

Luis Federico Molina

Luis Federico Molina

Mancha anillada

Luis Federico Molina

Mancha anular café

International Plant Protection Convention

RECOMENDACIONES

Luis Federico Molina

Luis Federico Molina

Mancha de aceite

International Plant Protection Convention

PLAGAS Aloe vera

Luis Federico Molina

Luis Federico Molina

Mancha rojiza

Luis Federico Molina

Mildeo

Luis Federico Molina

Peca negra

International Plant Protection Convention

DIAGNÓSTICO QUINDIO

Luis Federico Molina

Luis Federico Molina Luis Federico Molina

Peca negra

Luis Federico Molina

Peca roja

Luis Federico Molina

Peca roja

International Plant Protection Convention

RECOMENDACIONES

Luis Federico Molina

Luis Federico Molina

Pudrición basal fétida

International Plant Protection Convention

RECOMENDACIONES

Luis Federico Molina

Luis Federico Molina

Pudrición basal fétida

International Plant Protection Convention

RECOMENDACIONES

Luis Federico Molina

Luis Federico Molina

Pudrición basal fétida

International Plant Protection Convention

RECOMENDACIONES

Luis Federico Molina

Luis Federico Molina

Pudrición basal fétida

Luis Federico Molina

Pudrición basal fétida

Luis Federico Molina

Pudrición de la raíz

Luis Federico Molina

Pudrición húmeda raíz

Luis Federico Molina

Pudrición húmeda raíz

Luis Federico Molina

Pudrición húmeda raíz

Luis Federico Molina

Pudrición húmeda raíz

Luis Federico Molina

Pudrición húmeda raíz

Luis Federico Molina

Punta de ceniza

Luis Federico Molina

Punta de ceniza

Raspado foliar

Raspado foliar

International Plant Protection Convention

DIAGNÓSTICO QUINDIO

Luis Federico Molina

http://eol.org/data_objects/21094172

Luis Federico Molina

Raspado foliar

Luis Federico Molina

Volcamiento

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Pudrición vascular raíz

Luis Federico Molina

Otros

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Otros

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Otros

International Plant Protection Convention

DIAGNÓSTICO QUINDIO

Luis Federico Molina

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Otros

International Plant Protection Convention

PLAGAS Aloe vera

Luis Federico Molina

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Otros

Luis Federico Molina

Otros

Luis Federico Molina

Otros

Luis Federico Molina

Otros

•Alternaria sp.

•Botryodiplodia sp.

•Botrytis sp.

•Cladosporium sp.

•Colletotrichum sp.

•Curvularia sp.

•Dysmicoccus grassii (D. alazon)

•Epicoccum sp.

•Fusarium oxysporum.

•Fusarium sp.

•Glomerella sp.

•Isariopsis sp.

•Meloidogyne sp.

•Pantoea sp.

•Pectobacterium sp.

•Pestalotia sp.

•Phoma sp.

•Pseudomonas sp.

•Phytium sp.

•Phytophthora sp.

•Rhizoctonia sp.

•Torula sp.

•Tylenchus sp.

•Virus RNA (no identificado)

Resultados de laboratorio 2014 Dirección Técnica de Análisis y Diagnóstico Agrícola-ICA

RECOMENDACIONES

Contar con asistencia técnica idónea (Ingeniero agrónomo).

Planear el cultivo con inteligencia. (Costo/Beneficio).

No sembrar, si no tiene garantizada la comercialización.

Implementar Manejo integrado de plagas y enfermedades.

Implementar Buenas Prácticas Agrícolas (BPA).

RECOMENDACIONES

Siembra de material de propagación proveniente de lotes

libres de la enfermedad. Hijuelos sanos.

Distancias de siembra amplias: Ej. 1,20 m entre surcos

x 0,8 a 1,0 m entre plantas. De 10.000 a 8330 plantas/Ha).

Aislar los cultivos, por ejemplo con surcos de maíz.

Control oportuno de malezas (evitar microclima).

Evitar el riego por aspersión, prefiriendo el riego por

goteo (fertirriego) o de superficie (surcos).

Utilizar acolchado plástico (control de malezas y riego).

Hacer rotación de cultivos.

Eliminar residuos de follaje infectado.

Nutrición (análisis de suelos, foliar).

Evitar aplicar gallinaza.

RECOMENDACIONES

Vista de un corte de hoja de A. vera.

(a) Sección transversal y (b) Sección longitudinal. Las flechas cerradas

indican la cáscara; la flecha abiertas indica la pulpa; las puntas de

flechas abiertas indican los haces vasculares. (Ni et al., 2004).

International Plant Protection Convention

RECOMENDACIONES

Luis Federico Molina

¡Asegúrese de que los hijuelos provienen de plantas sanas!.

International Plant Protection Convention

MANEJO

Luis Federico Molina

RECOMENDACIONES

Luis Federico Molina

International Plant Protection Convention

RECOMENDACIONES

Luis Federico Molina

RECOMENDACIONES

Luis Federico Molina

Luis Federico Molina Luis Federico Molina

Luis Federico Molina

Luis Federico Molina

Ejemplo de venta

de plántulas (Universidad Nacional

Sede Bogotá)

Discusión

De acuerdo con la directriz de la Dirección Técnica de Epidemiología y

Vigilancia Fitosanitaria, en memorando N° 20134100043 del 13/07/2013,

ante cualquier sospecha de plagas o una vez comprobada la presencia

de alguna plaga, se procede a notificar a dicha dirección técnica, para

que ésta, junto con las demás direcciones responsables, inicien la

implementación de los respectivos planes fitosanitarios que puedan

requerirse y las acciones correspondientes de verificación y notificación

oficial de plagas, de acuerdo con los estándares Internacionales de la

Convención Internacional de Protección fitosanitaria (CIPF).

Mediante memorando ICA N° 20143126248 del 24/11/2014 la Dirección

Técnica de Sanidad Vegetal notificó oficialmente a la Dirección Técnica

de Epidemiología y Vigilancia Fitosanitaria sobre las plagas encontradas

en sábila durante el año 2014, con el fin de que se actualice el estatus

fitosanitario de dicho cultivo.

Los postulados de Koch

En su versión más sencilla, dichos postulados contemplan cuatro

enunciados –tres en la versión original– que, acompañados de la

experimentación, ayudan a resolver la cuestión de la causa de las

enfermedades. En primer lugar, plantean la necesidad de la asociación

constante de un agente biótico con el hospedero enfermo, para

proceder luego a su aislamiento, su caracterización y su cultivo in

vitro en ausencia de otros microorganismos. Una vez lograda esta

segunda fase bajo condiciones axénicas, la inoculación de un

hospedero sano con los propágulos de este microorganismo

(células, esporas, etc.) debe reproducir y desencadenar el mismo cuadro

patológico inicial, es decir, el mismo síndrome de la enfermedad con

su típica sintomatología y alteraciones en el hospedero y, finalmente,

los dos aislamientos del agente biótico –el natural y el cultivado– deben

coincidir en sus rasgos morfológicos y biológicos relevantes.

(Volcy, 2010).

Bibliografía • Ayodele, S.M. y E. M. Ilondu. 2008. Fungi associated with base rot disease of aloe vera (Aloe barbadensis). African Journal of Biotechnology 7

(24), 4471-4474.

• Cedeño, L., Briceño R., A. y Fermín, G. 2010. Antracnosis en zábila causada por Colletotrichum gloeosporioides en la zona árida del estado

Mérida, Venezuela. Fitopatol. Venez. 23:30-34.

• Chavan, S.P. y S.L. Korekar, 2011. A survey of some medicinal plants for fungal diseases from osmanabad district of maharashtra state. Recent

Research in Science and Technology, 3(5): 15-16.

• De Laat PCA, JTW Verhoeven y JD Janse . 1994. Bacterial leaf rot of Aloe vera L., caused by Erwinia chrysanthemi biovar 3. European Journal

of Plant Pathology 100, 81-84.

• Da Silva, W. L. y R. Singh, 2012. First Report of Alternaria alternata Causing Leaf Spot on Aloe vera in Louisiana. Plant Disease 96:9, 1379-1379.

• Ji, G., L. Wei, Y. He y Y. Wu, 2007. First Report of Aloe Root and Stem Rot in China Caused by Fusarium solani. Plant Disease 91:6, 768-768.

• Jin KS, SW Lee, JJ. Kim y HY Ryu. 1994. Identification of bacterial isolates obtained from diseased orchid and aloe plants caused by Erwinia

chrysanthemi. RDA Journal of Agricultural Science Crop Protection 36, 301-306.

• Leah L., L. Quesada-Ocampo, K. Lamour y M. Hausbeck. 2012. Advances in Research on Phytophthora capsici on Vegetable Crops in The

United States. Plant Disease / Vol. 95 (11), 1588: 1600.

• Mandal, K. y S. Maiti, 2005. Bacterial soft rot of aloe caused by Pectobacterium chrysanthemi: a new report from India. New DiseaseReports,11,1.

• Ni, Y., D. Turner, K.M. Yates y I. Tizard. 2004. Isolation and characterization of structural components of Aloe vera L. leaf pulp. International

Immunopharmacology, Vol: 4, 1745–1755.

• Ray, A., Shashaank M. Aswatha. 2013. An analysis of the influence of growth periods on physical appearance, and acemannan and elemental

distribution of Aloe vera L. gel Industrial Crops and Products 48, 36– 42.

• Rodríguez-González, V.M. , A. Femenia, R.F. González-Laredo, N.E. Rocha-Guzmán, J.A. Gallegos-Infante, M.G. Candelas-Cadillo, P. Ramírez-

Baca, S. Simal y C. Rosselló. 2011. Effects of pasteurization on bioactive polysaccharide acemannan and cell wall polymers from Aloe

barbadensis Miller. Carbohydrate Polymers 86, 1675– 1683.

• Surjushe A., R. Vasani y D. Saple, 2008. Aloe vera: a short review. Indian J Dermatol, 53(4): 163–166.

• Volcy, C. 2008. Génesis y evolución de los postulados de koch y su relación con la fitopatología. Una revisión. Agronomía Colombiana; Vol. 26,

núm. 1, 107-115.

• Zhai, L. F., J. Liu, M. X. Zhang, N. Hong, G. P. Wang y L. P. Wang. The First Report of Leaf Spots in Aloe vera Caused by Nigrospora oryzae in

China. Plant Disease 2013 97:9, 1256-1256.

• Zunilde, L., D. Tua y R. Medina. 2004. Pudrición del tallo y raíz en zábila (Aloe vera ) causada por Rhizoctonia en el estado Falcón, Venezuela.

Fitopatol. Venez. 17: 49-51.