Mikrobiologische Qualitätskontrolle

in der Lebensmittel- und Getränkeindustrie

Nährkartonscheiben – Fertignährmedien

Filtrationsgeräte – Zubehör

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Liebe Leserinnen, liebe Leser,

seit nunmehr über 25 Jahren stehen wir mit unserem Wissen,

unseren Fähigkeiten und Erfahrungen im Dienste unserer Kun-

den. Die mikrobiologische Qualitätskontrolle in der Getränke-

industrie ist dabei ein Schwerpunkt. Dies zeigt sich nicht nur in

unserem Produktsortiment, das auf die spezifischen Anforde-

rungen der Getränkeindustrie ausgerichtet ist. Auch mit fach-

licher Unterstützung stehen wir unseren Kunden im Bedarfsfall

zur Seite. Das Vertrauen, das sie in uns setzen und mit dem wir

stetig gewachsen sind, spornt uns an, unsere Zuverlässigkeit

und Flexibilität täglich erneut unter Beweis zu stellen.

Wir freuen uns, Ihnen im vorliegenden Katalog zum ersten Mal

in einer Gesamtausgabe einen umfassenden Überblick über

unser Produktsortiment geben zu können. Neben Nährmedien,

allen voran Nährkartonscheiben, für deren Fertigung wir uns

auf eine langjährige Erfahrung stützen können, haben wir auch

Zubehör zusammengestellt, das für den Einsatz in einem

mikrobiologischen Labor sinnvoll ist.

Wir wünschen Ihnen viel Spaß beim Lesen,

Ihr Dr. Möller & Schmelz – Team

Dr. Otfried Möller

Klaus Jürgen Schmelz

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Inhaltsverzeichnis:

Nährkartonscheiben .................................................................................................................................4

Einführung ...................................................................................................................................4

Qualitätssicherung .......................................................................................................................4

Sortenüberblick ...........................................................................................................................5

Bestimmung der Anzahl heterotropher, mesophiler Bakterien .....................................5

Nachweis und Bestimmung von E. coli und coliformen Keimen ....................................7

Nachweis von Enterokokken ..........................................................................................9

Nachweis und Bestimmung von Pseudomonaden ...................................................... 10

Nachweis von Milchsäurebakterien ............................................................................ 11

Nachweis von Hefen und Schimmelpilzen ................................................................... 12

Nachweis besonderer Mikroorganismen oder Gruppen von Mikroorganismen ........ 15

Bestellinformation .................................................................................................................... 17

Gebrauchsfertige Agar- und Flüssignährmedien ................................................................................... 18

Einführung ................................................................................................................................ 18

Qualitätssicherung .................................................................................................................... 19

Bestellinformation .................................................................................................................... 20

Filtrationsgeräte und Zubehör .............................................................................................................. 21

Filtrationsgeräte ....................................................................................................................... 21

Zubehör .................................................................................................................................... 22

Bestellinformation .................................................................................................................... 22

Abkürzungsverzeichnis .......................................................................................................................... 23

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Nährkartonscheiben

Einführung

Nährkartonscheiben (NKS) sind sterile Trockennährböden, die nach Befeuchten sofort einsatzbereit

sind. Sie bestehen aus einem biologisch inerten Zellulosekarton, der als Trägermaterial für die Nähr-

lösung dient. Da die Nährstoffe weder chemisch noch physikalisch gebunden werden, stehen sie den

Mikroorganismen vollständig zum Wachstum zur Verfügung.

Die Zusammensetzung der für die verschiedenen NKS eingesetzten Nährlösungen entsprechen den in

einschlägigen Normen und Vorschriften festgelegten Rezepturen.

Nährkartonscheiben bieten gegenüber herkömmlichen Agarnährböden deutliche Vorteile:

- Lagerung bei Raumtemperatur

- Haltbarkeit bis zu 2 Jahre

- Nach Befeuchtung sofort einsatzbereit

- Einfache Handhabung

Qualitätssicherung

Sowohl die Fertigungsprozesse als auch die Qualitätskontrolle der Nährkartonscheiben sind in unser

Qualitätsmanagementsystem eingebunden und orientieren sich an den GMP – Richtlinien.

Der Zellulosekarton, der als Trägermaterial der NKS dient, wird chargenbezogen auf Dicke (nach

DIN EN ISO 20534), Flächengewicht (nach DIN EN ISO 536) und Wasseraufnahmekapazität (internes

Testverfahren) geprüft. Zusätzlich erfolgt eine Untersuchung auf wachstumshemmende Stoffe.

Die unter Reinraumbedingungen hergestellten Petrischalen, in die die getränkten Nährkartonschei-

ben eingelegt werden, werden regelmäßig auf Keimfreiheit untersucht.

Für die Herstellung der Tränklösungen kommen nur Komponenten von zertifizierten Lieferanten zum

Einsatz. Die Einwaagen der einzelnen Rezepturbestandteile werden zur Rückverfolgbarkeit mit deren

Lotnummern dokumentiert. Auch die Einstellung des pH-Werts wird erfasst. Unmittelbar an die Fer-

tigstellung der Tränklösung schließt sich die Verarbeitung, d.h. die Tränkung der Kartonscheiben, an.

Die sich der Tränkung anschließende Trocknungsphase wird unter kontrollierten Bedingungen durch-

geführt.

Bei einem nach EN ISO 13485:2003 zertifizierten Dienstleister erfolgt die Sterilisation der NKS in ei-

nem validierten Prozess.

Bei der Endkontrolle der fertigen Produkte werden Sterilität, Wiederfindungsraten und gegebenen-

falls Farbreaktionen mit Positiv- und Negativkeimen geprüft. Nur wenn alle Vorgaben erfüllt sind,

dürfen die NKS unser Haus verlassen.

Mit unserem chargenbezogenen Qualitätszertifikat, das jeder Packung beiliegt, bestätigen wir Ihnen,

das unsere Qualitätsstandards geprüft und erfüllt sind.

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Sortenüberblick

NKS für die Bestimmung der Anzahl heterotropher, mesophiler Bakterien

Die Anzahl der mesophil, heterotroph wachsenden Bakterien gibt einen Hinweis für den allgemeinen

Hygienestatus von Proben. Für deren Bestimmung werden in Abhängigkeit verschiedener Vorschrif-

ten, Normen oder interner Standards unterschiedliche Nährmedien empfohlen oder vorgegeben.

Caso – NKS 1030 / 1030-H Verwendung Zur Bestimmung der Koloniezahl aus pharmazeutischen und kosmeti-

schen Untersuchungsmaterialien Rezeptur Nach EP und USP Empfohlener Membranfilter Grün mit Gitter, Porengröße 0,45 µm Inkubationsempfehlung 1 – 3 Tage bei 37 °C Wachstum Beige, bei Pigmentbildung auch farbig __________________________________________________________________________________

Hefeextrakt – NKS 1081 / 1081-H Verwendung Zur Bestimmung der Koloniezahl aus Wasser und Abwasser Rezeptur Nach EN ISO 6222:1999 Empfohlener Membranfilter Grün mit Gitter, Porengröße 0,45 µm Inkubationsempfehlung 2 – 3 Tage bei 30 °C Wachstum Beige, bei Pigmentbildung auch farbig __________________________________________________________________________________

m-TGE – NKS 1113 / 1113-H Verwendung Zur Bestimmung der Koloniezahl aus Wasser, Lebensmitteln und an-

derem Untersuchungsmaterial Rezeptur Nach APHA Empfohlener Membranfilter Grün mit Gitter, Porengröße 0,45 µm Inkubationsempfehlung 1 – 3 Tage bei 37 °C Wachstum Beige, bei Pigmentbildung auch farbig __________________________________________________________________________________

Plate Count – NKS 1140 / 1140-H Verwendung Zur Bestimmung der Koloniezahl aus Wasser, Milch und anderen Le-

bensmitteln Rezeptur Nach APHA Empfohlener Membranfilter Grün mit Gitter, Porengröße 0,45 µm Inkubationsempfehlung 2 – 3 Tage bei 30 °C Wachstum Beige, bei Pigmentbildung auch farbig __________________________________________________________________________________

R2A – NKS 1155 / 1155-H Verwendung Zur Bestimmung der Koloniezahl aus Wasser und anderem Untersu-

chungsmaterial. Das nährstoffarme Medium bietet anspruchslosen und gestressten Wasserbakterien bei niedrigen Temperaturen und längerer Inkubationszeit optimale Wachstumsbedingungen.

Rezeptur Nach EP, USP Empfohlener Membranfilter Grün mit Gitter, Porengröße 0,45 µm Inkubationsempfehlung 3 – 5 Tage bei 20 °C oder 1 – 3 Tage bei 35 °C Wachstum Beige, bei Pigmentbildung auch farbig. __________________________________________________________________________________

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Standard – NKS 1190 / 1190-H Verwendung Zur Bestimmung der Koloniezahl aus Wasser, Abwasser und Geträn-

ken Rezeptur Nach DEV Empfohlener Membranfilter Grün mit Gitter, Porengröße 0,45 µm Inkubationsempfehlung 2 – 3 Tage bei 20 °C oder 1 – 2 Tage bei 30 °C Wachstum Beige, bei Pigmentbildung auch farbig __________________________________________________________________________________

Standard TTC – NKS 1200 / 1200-H Verwendung Zur Bestimmung der Koloniezahl aus Wasser, Abwasser und Geträn-

ken Rezeptur Nach DEV, modifiziert Empfohlener Membranfilter Grün mit Gitter, Porengröße 0,45 µm Inkubationsempfehlung 2 – 3 Tage bei 20 °C oder 1 – 2 Tage bei 30 °C Wachstum Durch den Zusatz von 2,3,5-Triphenyltetrazoliumchlorid (TTC) er-

scheinen alle Kolonien auf Grund der Bildung von Formazan aus TTC rötlich. Die optische Auswertung wird dadurch wesentlich erleichtert.

Gebrauchsanweisung für die Verwendung von NKS

Generell ist auf die Sterilität aller Geräte und die Einhaltung der Regeln für steriles Arbeiten

zu achten.

1 Zehnerpackbeutel aufschneiden und Petrischale mit eingelegter Nährkartonscheibe ent-

nehmen.

2 Nährkartonscheibe in der Petrischale mit 3 – 3,5 ml sterilem, destillierten oder deminera-

lisierten Wasser befeuchten. Bei optimaler Befeuchtung ist ein deutlicher Flüssigkeitsüber-

schuss in der Petrischale zwischen NKS und Schalenrand sichtbar.

3 Siegelpackung des Membranfilters öffnen, Membran mit steriler Pinzette entnehmen, auf

die Fritte des Filtrationsgerätes legen und Filtertrichter aufsetzten.

4 Untersuchungsmaterial filtrieren, mit sterilem Wasser oder Peptonwasser nachspülen

und sorgfältig restlos mit Vakuum absaugen.

Hinweis: Zur Handhabung des Filtrationsgerätes beachten Sie bitte die Bedienungsanleitung

des Geräteherstellers.

5 Membranfilter vorsichtig mit einer sterilen Pinzette von der Fritte abnehmen, luftblasen-

frei auf die vorbereitete Nährkartonscheibe (s. oben) legen und Petrischale mit dem Deckel

nach oben bebrüten. Die Inkubationsbedingungen sind dabei abhängig von der NKS-Typ.

Hinweis: Wachstum und positive Reaktion auf Selektivmedien sind als Verdacht anzusehen.

Zur sicheren Identifikation sind weitere Untersuchungen (z.B. „Bunte Reihe“) erforderlich.

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NKS für den Nachweis und die Bestimmung von E. coli und coliformen Keimen

Das Vorhandensein coliformer Keime und insbesondere von E. coli ist ein Indikator für fäkale Verun-

reinigungen. Während die meisten dieser Darmbakterien eher als harmlos einzustufen sind, können

einige Vertreter dieser Gruppe ernste gesundheitliche Probleme verursachen. Die Überprüfung von

Lebensmitteln und Getränken auf Abwesenheit dieser Mikroorganismen vor Freigabe für den Handel

ist daher über Verordnungen geregelt.

Colichrom – NKS 1035 / 1035-H Verwendung Zum selektiven und quantitativen Schnellnachweis und Differenzie-

rung von E. coli, coliformen und nicht-coliformen Keimen aus Wasser, Abwasser und Getränken

Rezeptur Nach Frampton et al. (1988), modifiziert Empfohlener Membranfilter Weiß mit Gitter, Porengröße 0,45 µm Inkubationsempfehlung 16 – 24 Stunden bei 37 °C Wachstum Auf Grund von chromogenen Verbindungen wachsen Kolonien von

E. coli blau, die anderer coliformen Bakterien rötlich und die, nicht-coliformer Mikroorganismen beige. Gram-positive Begleitflora wird durch Gallensalze gehemmt.

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ECD MUG – NKS 1080 / 1080-H Verwendung Zum selektiven und quantitativen Direktnachweis von E. coli aus Was-

ser, Abwasser und Getränken Rezeptur Nach Schweizerischem Lebensmittelbuch Empfohlener Membranfilter Weiß mit Gitter, Porengröße 0,45 µm Inkubationsempfehlung 10 – 20 Stunden bei 44 °C Wachstum Die erhöhte Inkubationstemperatur von 44 °C fördert das Wachstum

von E. coli und inhibiert gleichzeitig die Entwicklung der Begleitflora. Kolonien von E. coli fluoreszieren unter UV-Licht (366 nm) und wer-den nach Indol-Färbung kirschrot. Gram-positive Begleitflora wird durch Gallensalze gehemmt. Nach dem Schweizerischen Lebensmit-telbuch ist eine weitere Identifizierung nicht erforderlich.

Mischkultur von E. coli und Enterobacter aerogenes. Das linke Bild zeigt das Koloniebild nach einer Inkubationszeit von

18 Stunden bei 37 °C. Bei Beleuchtung mit UV – Licht (366 nm) sind, wie auf dem mittleren Bild zu sehen, fluoreszierende

Kolonien erkennbar. Dieselbe Probe ist auf dem rechten Bild nach dem Indol-Test dargestellt. Einige Kolonien sind rot ge-

färbt. Kolonien, die in beiden Tests positiv reagieren (Fluoreszenz und Rotfärbung), sind als E. coli zu bewerten.

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Endo – NKS 1090 / 1090-H Verwendung Zum Nachweis von coliformen Keimen aus Wasser, Abwasser und

anderen Untersuchungsmaterialien Rezeptur Nach DEV Empfohlener Membranfilter Weiß mit Gitter, Porengröße 0,45 µm Inkubationsempfehlung 24 Stunden bei 37 °C oder 42 – 44 °C Wachstum Kolonien coliformer Keime zeigen eine rote Farbe, bedingt durch das

vorhandene Fuchsin. E. coli Stämme entwickeln eine intensivere Fär-bung, woraus sich bei einigen Stämmen ein metallischer Glanz bilden kann. Durch eine erhöhte Inkubationstemperatur wird die Entwick-lung von E. coli gefördert und das Wachstum von Begleitflora gleich-zeitig inhibiert. Gram-positive Begleitflora wird zusätzlich durch Gal-lensalze gehemmt.

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Laktose TTC Tergitol – NKS 1092 / 1092-H Verwendung Zum Nachweis von coliformen Keimen aus Wasser, Abwasser und

anderen Untersuchungsmaterialien Rezeptur Nach EN ISO 9308:2000 Empfohlener Membranfilter Weiß mit Gitter, Porengröße 0,45 µm Inkubationsempfehlung 18 – 24 Stunden bei 37 ± 1 °C Wachstum Durch die Eigenschaft coliformer Keime Laktose vergären zu können,

entsteht Säure, die den pH-Indikator von blaugrün nach gelb um-schlagen lässt. E. coli bildet dabei gelbe Kolonien mit gelbem Hof, andere coliforme Keime wachsen gelb-orange mit gelbem Hof. Lakto-se-negative Begleitkeime bilden rote Kolonien, manchmal mit bläuli-chem Hof. Die Farbausprägung ist abhängig vom jeweiligen Stamm. Gram-positive Begleitflora wird durch Gallensalze gehemmt.

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MacConkey – NKS 1098 / 1098-H Verwendung Zum selektiven Nachweis und zur Differenzierung Enterobacteriaceae

aus Abwasser, Lebensmitteln und anderen Untersuchungsmaterialien Rezeptur Nach EP und USP Empfohlener Membranfilter Weiß mit Gitter, Porengröße 0,45 µm Inkubationsempfehlung 21 ± 3 Stunden bei 37 ± 1 °C Wachstum E. coli bildet rote, andere coliforme Bakterien rosa-farbene Kolonien.

Die Kolonien von Salmonellen und Shigellen bleiben dagegen farblos. Gram-positive Begleitflora wird durch Gallensalze gehemmt.

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m-FC – NKS 1100 / 1100-H Verwendung Zum Nachweis von fäkalen, coliformen Keimen aus Abwasser und

anderen Untersuchungsmaterialien Rezeptur Nach Geldreich et al. (1965) Empfohlener Membranfilter Weiß mit Gitter, Porengröße 0,45 µm Inkubationsempfehlung 16 – 24 Stunden bei 44 °C Wachstum Die erhöhte Inkubationstemperatur von 44 °C fördert das Wachstum

von E. coli und inhibiert gleichzeitig die Entwicklung der Begleitflora. E. coli bildet in der Regel bereits nach 16 Stunden blaue Kolonien. Gram-positive Begleitflora wird durch Gallensalze gehemmt.

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Teepol – NKS 1210 / 1210-H Verwendung Zum Nachweis von coliformen Keimen aus Wasser, Abwasser und

anderen Untersuchungsmaterialien Rezeptur Nach DEV Empfohlener Membranfilter Weiß mit Gitter, Porengröße 0,45 µm Inkubationsempfehlung 18 – 24 Stunden bei 44 °C Wachstum Die erhöhte Inkubationstemperatur von 44 °C fördert das Wachstum

von E. coli und inhibiert gleichzeitig die Entwicklung der Begleitflora. Durch Vorbebrütung (6 Stunden bei 25 °C) werden auch subletal ge-schädigte Keime gut erfasst. E. coli und coliforme Keime bilden gelbe Kolonien. Gram-positive Begleitflora wird durch Gallensalze und Laurylsulfat gehemmt.

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Tergitol TTC – NKS 1220 / 1220-H Verwendung Zum Nachweis von coliformen Keimen aus Wasser, Abwasser und

anderen Untersuchungsmaterialien Rezeptur Nach EN ISO 9308:2000, modifiziert Empfohlener Membranfilter Weiß mit Gitter, Porengröße 0,45 µm Inkubationsempfehlung 21 ± 3 Stunden bei 37 °C Wachstum Durch die Vergärung von Laktose, wozu alle coliformen Keimen in der

Lage sind, entsteht Säure, die den pH-Indikator nach gelb umschlagen lässt. E. coli bildet nach 12 – 16 Stunden kleine gelbliche, später grö-ßere gelborange Kolonien mit gelbem Hof. Laktose-negative Begleit-keime bilden rote Kolonien, zum Teil mit bläulichem Hof. Die Farb-ausprägung ist abhängig vom jeweiligen Stamm. Gram-positive Be-gleitflora wird durch Gallensalze gehemmt.

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NKS für den Nachweis von Enterokokken

Enterokokken, die früher den Streptokokken zugeordnet waren, spielen eine wichtige Rolle im Ver-

dauungstrakt von Menschen und Tieren und werden auch bei der Herstellung von Lebensmitteln

eingesetzt. Bei immungeschwächten Menschen können jedoch einige Vertreter dieser Bakterien

ernste Erkrankungen auslösen. Die Untersuchung von Trink-, Mineral- und Tafelwasser ist daher vor-

geschrieben.

Azid – NKS 1010 / 1010-H Verwendung Zum Nachweis von Enterokokken aus Wasser und anderem Untersu-

chungsmaterial Rezeptur Nach Slanetz und Bartley (1957), EN ISO 7899-2 Empfohlener Membranfilter Weiß mit Gitter, Porengröße 0,45 µm Inkubationsempfehlung 24 – 48 Stunden bei 37 °C Wachstum Enterokokken bilden kleine dunkelrote Kolonien. Das Wachstum der

Begleitflora wird durch Azid gehemmt. __________________________________________________________________________________

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Enterokokken – NKS 1091 / 1091-H Verwendung Zum Nachweis von Enterokokken aus Wasser und anderem Untersu-

chungsmaterial Rezeptur Nach EN ISO 7899-2, modifiziert Empfohlener Membranfilter Weiß mit Gitter, Porengröße 0,45 µm Inkubationsempfehlung 24 – 48 Stunden bei 37 °C Wachstum Enterokokken bilden kleine dunkelrote Kolonien. Das Wachstum der

Begleitflora wird durch Azid gehemmt. __________________________________________________________________________________

NKS für den Nachweis und die Bestimmung von Pseudomonaden

Pseudomonaden sind ubiquitär. Sie sind im Wasser, im Boden und auf und in Pflanzen und Tieren zu

finden. Einige Vertreter dieser aeroben, gram-negativen Stäbchen können für den Menschen gefähr-

lich werden. Die Untersuchung von Trink-, Mineral-, Tafel- und Badewasser auf Pseudomonaden ist

daher gesetzlich vorgeschrieben.

Cetrimid – NKS 1040 / 1040-H Verwendung Zum Nachweis von Ps. aeruginosa aus Wasser, pharmazeutischen und

kosmetischen Produkten sowie anderem Untersuchungsmaterial Rezeptur Nach EP, USP Empfohlener Membranfilter Weiß mit Gitter, Porengröße 0,45 µm Inkubationsempfehlung 24 – 48 Stunden bei 37 °C Wachstum Ps. aeruginosa bildet blaugrüne Kolonien mit blauem Hof. Begleitflora

wird durch Cetrimid im Wachstum gehemmt. __________________________________________________________________________________

Pseudomonas CN – NKS 1145 /1145-H Verwendung Zum Nachweis von Ps. aeruginosa aus Wasser, Abwasser und anderen

Untersuchungsmaterialien Rezeptur Nach EN ISO 16266 (früher DIN 12870) Empfohlener Membranfilter Weiß mit Gitter, Porengröße 0,45 µm Inkubationsempfehlung 24 – 48 Stunden bei 37 °C Wachstum Ps. aeruginosa bildet blaugrüne Kolonien mit blaugrünem Hof. Die

Intensität der Farbbildung kann abhängig vom Stamm unterschiedlich ausfallen. Begleitflora wird durch Cetrimid und Nalidixinsäure im Wachstum gehemmt.

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NKS für den Nachweis von Milchsäurebakterien

Milchsäurebakterien sind eine heterogene Gruppe von anaeroben, meist aber aerotoleranten Bakte-

rien, die alle in der Lage sind, Glukose zu Milchsäure zu vergären. Obwohl Milchsäurebakterien eine

wichtige Rolle in der Herstellung von Lebensmitteln spielen, sind die Stoffwechselprodukte einiger

Vertreter in Produkten der Getränkeindustrie unerwünscht, da sie zu Fehlaromen und Verderbnis

führen. Die routinemäßige Untersuchung auf Milchsäurebakterien in den Fertigungsprozessen spielt

daher eine wichtige Rolle.

Bier – NKS 1020 / 1020-H Verwendung Zum Nachweis von bierschädlichen Keimen u.a. der Gattung Lactoba-

cillus, Pediococcus und Zymomonas. Rezeptur Nach Konzulis und Page (1968), modifiziert Empfohlener Membranfilter Grün mit Gitter, Porengröße 0,45 µm Inkubationsempfehlung 2 – 5 Tage bei 30 °C unter anaeroben Bedingungen Wachstum Das Wachstum von Hefen kann durch Zugabe von Actidion unter-

drückt werden. __________________________________________________________________________________

MRS – NKS 1110 / 1110-H Verwendung Zum Nachweis von Milchsäurebakterien aus Süßgetränken, Lebens-

mitteln und anderem Untersuchungsmaterial. Rezeptur Nach De Man, Rogosa und Sharpe (1960), modifiziert Empfohlener Membranfilter Grün mit Gitter, Porengröße 0,45 µm Inkubationsempfehlung 3 – 5 Tage bei 30 °C unter anaeroben Bedingungen Wachstum Das Wachstum von Hefen und Schimmelpilzen wird durch Actidion

(Bestandteil der Rezeptur) unterdrückt. __________________________________________________________________________________

Wein – NKS 1230 / 1230-H Verwendung Zum selektiven Nachweis von weinschädlichen Keimen, u.a. der Gat-

tung Leuconostoc, Lactobacillus und Pediococcus. Unter anaeroben Bedingungen ist auch Acetobacter nachweisbar.

Rezeptur Optimiertes Tomatensaft-Medium Empfohlener Membranfilter Grün mit Gitter, Porengröße 0,45 µm Inkubationsempfehlung 2 – 5 Tage bei 30 °C unter anaeroben Bedingungen Wachstum Das Wachstum von Hefen und Schimmelpilzen wird durch Actidion

(Bestandteil der Rezeptur) unterdrückt. __________________________________________________________________________________

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NKS zum Nachweis von Hefen und Schimmelpilzen

Ebenso wie manche Bakterien, spielen Hefen und Schimmelpilze bei der Herstellung von Lebensmit-

teln z. B. von Bier, Wein, Käse und Backwaren eine wichtige Rolle. Einige Vertreter sind in bestimm-

ten Herstellungsprozessen jedoch unerwünscht, da sie zu Fehlaromen führen, die Haltbarkeit der

Lebensmittel beeinträchtigen oder auch ernste gesundheitliche Probleme der Konsumenten verursa-

chen können. Die Überwachung der Produktionsprozesse hinsichtlich dieser Mikroorganismen ist

daher notwendig.

Brettanomyces – NKS 1025 / 1025-H Verwendung Zum Nachweis von Brettanomyces Hefen aus Wein, Bier und frucht-

safthaltigen Getränken Rezeptur M&S Empfohlener Membranfilter Grün mit Gitter, Porengröße 0,45µm Inkubationsempfehlung 3 – 5 Tage bei 30 °C Wachstum Brettanomyces Hefen bilden gelbe bis orangegelbe Kolonien mit gel-

bem Hof und sind daher leicht von den meist weißlichen bis creme-farben Kolonien der anderen Hefen zu unterscheiden, die zudem weitgehend durch Actidion gehemmt werden.

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Lysin – NKS 1095 / 1095-H Verwendung Zum selektiven Nachweis von „Wildhefen“ in Brauereien Rezeptur Nach Morris und Eddy (1957), modifiziert Empfohlener Membranfilter Grün mit Gitter, Porengröße 1,2 µm Inkubationsempfehlung 2 – 5 Tage bei 25 – 30 °C Wachstum Nur wilde Hefen können Lysin als einzige Stickstoff-Quelle verwerten.

Sie bilden meist weiße bis cremefarbene, gelegentlich auch rötliche Kolonien. Kulturhefen und Fremdhefen der Gattung Saccharomyces zeigen kein Wachstum.

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Malzextrakt – NKS 1099 / 1099-H Verwendung Zum selektiven Nachweis von Hefen und Schimmelpilzen aus Geträn-

ken, Lebensmitteln und anderem Untersuchungsmaterial Rezeptur Nach Reiss (1972), modifiziert Empfohlener Membranfilter Schwarz mit Gitter, Porengröße 0,6 µm Inkubationsempfehlung 2 – 5 Tage bei 25 °C Wachstum Hefen bilden weißliche bis cremefarbene, gelegentlich auch rötliche

Kolonien. Die Kolonien von Schimmelpilzen sind anfangs weiß mit deutlichem Luftmycel (samtartig) und färben sich bei Konidienbildung gelblich, grünlich oder bräunlich bis schwarz. Der niedrige pH-Wert des Mediums hemmt das Wachstum der meisten Bakterien. Säureto-lerante Keime können jedoch als Begleitkeime gelegentlich auftreten.

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OGY – NKS 1115 / 1115-H Verwendung Zum selektiven Nachweis von Hefen und Schimmelpilzen aus Le-

bensmitteln, Fruchtsaft sowie pharmazeutischem Untersuchungsma-terial

Rezeptur Nach Mossel et al. (1970), modifiziert Empfohlener Membranfilter Schwarz mit Gitter, Porengröße 0,6 µm Inkubationsempfehlung 2 – 3 Tage bei 25 – 30 °C Wachstum Hefen bilden weißliche bis cremefarbene, gelegentlich auch rötliche

Kolonien. Die Kolonien von Schimmelpilzen sind anfangs weiß mit deutlichem Luftmycel (samtartig) und färben sich bei Konidienbildung gelblich, grünlich oder bräunlich bis schwarz. Der niedrige pH-Wert des Mediums und das vorhandene Oxytetracyclin hemmen weitge-hend das Wachstum der bakteriellen Begleitflora.

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Osmophilen – NKS 1130 / 1130-H Verwendung Zum Nachweis von osmophilen und osmotoleranten Hefen und

Schimmelpilzen aus Zucker, Süßwaren und zuckerhaltigen Lebensmit-teln

Rezeptur Nach ICUMSA Empfohlener Membranfilter Grün mit Gitter, Porengröße 1,2 µm Inkubationsempfehlung 5 – 7 Tage bei 25 °C Wachstum Hefen bilden weißliche bis cremefarbene Kolonien. Die Kolonien von

Schimmelpilzen sind anfangs weiß mit deutlichem Luftmycel (samtar-tig) und färben sich bei Konidienbildung gelblich, grünlich oder bräun-lich bis schwarz. Der hohe Zuckergehalt hemmt das Wachstum der Begleitflora.

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Sabouraud – NKS 1160 / 1160-H Verwendung Zum Nachweis von Hefen und Schimmelpilzen aus pharmazeutischen

und kosmetischen Produkten, Verpackungsmaterial, sowie zur Isolie-rung von Dermatophyten und zur Reinkultur

Rezeptur Nach EP, USP Empfohlener Membranfilter Grün mit Gitter, Porengröße 1,2 µm Inkubationsempfehlung 2 – 5 Tage bei 25 – 30 °C Wachstum Hefen bilden weißliche bis cremefarbene, gelegentlich auch rötliche

Kolonien. Die Kolonien von Schimmelpilzen sind anfangs weiß mit deutlichem Luftmycel (samtartig) und färben sich bei Konidienbildung gelblich, grünlich oder bräunlich bis schwarz. Der niedrige pH-Wert des Mediums hemmt das Wachstum der meisten Bakterien und för-dert die Entwicklung von Hefen und Schimmelpilzen.

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Schaufus Pottinger – NKS 1180 / 1180-H Verwendung Zum Nachweis von Hefen und Schimmelpilzen aus Zucker und zucker-

haltigen Getränken Rezeptur Nach Schaufus und Pottinger, modifiziert Empfohlener Membranfilter Grün mit Gitter, Porengröße 1,2 µm Inkubationsempfehlung 2 – 3 Tage bei 25 – 30 °C Wachstum Durch Säureproduktion der zuckervergärenden Hefen und Schimmel-

pilze schlägt der pH-Indikator von blaugrün nach gelb um und führt zu gelblichen Kolonien, zum Teil mit gelbem Hof. Nicht – Säurebildner wachsen dagegen blaugrün. Der niedrige pH-Wert des Mediums hemmt das Wachstum der meisten Bakterien und fördert die Ent-wicklung von Hefen und Schimmelpilzen.

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Würze – NKS 1260 / 1260-H Verwendung Zum Nachweis von Hefen und Schimmelpilzen aus Getränken, Le-

bensmitteln und anderem Untersuchungsmaterial Rezeptur Nach Rapp (1974) Empfohlener Membranfilter Schwarz mit Gitter, Porengröße 0,6 µm Inkubationsempfehlung 2 – 5 Tage bei 25 °C Wachstum Hefen bilden weißliche bis cremefarbene, gelegentlich auch rötliche

Kolonien. Die Kolonien von Schimmelpilzen sind anfangs weiß mit deutlichem Luftmycel (samtartig) und färben sich bei Konidienbildung gelblich, grünlich oder bräunlich bis schwarz. Der niedrige pH-Wert des Mediums hemmt das Wachstum der meisten Bakterien und för-dert die Entwicklung von Hefen und Schimmelpilzen.

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Befeuchtung der Nährkartonscheiben

Zur Benetzung der NKS mit dem optimalen Flüssigkeitsvolumen von 3,0 – 3,5 ml gibt es

viele Möglichkeiten. Zwei davon haben wir für Sie im Lieferprogramm.

Einfach und bequem sind die Ampullen, die mit 3,5 ml sterilem deionisierten Wasser

gefüllt sind (Artikelnummer 6105). Einfach aufdrehen und den Inhalt auf die NKS ge-

ben.

Die Selbstfüller-Dosierspritze (Artikelnummer 6100) ist stufenlos bis 5,0 ml einstellbar.

Durch einen sterilen Spritzenvorsatzfilter mit einer Porenweite von 0,2 µm wird das

voreingestellte Volumen direkt und steril auf die NKS dosiert. Danach füllt sich die

Spritze automatisch aus einem Vorratsgefäß mit vorbereitetem deionisierten oder

demineralisiertem Wasser.

Die Bestellinformationen dazu finden Sie beim Zubehör auf Seite 22.

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Nachweis besonderer Mikroorganismen oder Gruppen von Mikroorganismen

Actinomyceten – NKS 1005 / 1005-H Verwendung Zum selektiven Nachweis von Actinomyceten aus Wasser, Boden,

Lebensmitteln und anderem Untersuchungsmaterial Rezeptur Nach Olson Empfohlener Membranfilter Grün mit Gitter, Porengröße 0,45 µm Inkubationsempfehlung 3 – 5 Tage bei 28 – 30 °C Wachstum Actinomyceten bilden vorwiegend knorpelige, fest auf dem Memb-

ranfilter haftende Kolonien unterschiedlicher Färbung mit matter, bei Bildung von Luftmycel samtartiger oder mehliger Oberfläche.

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BAT – NKS 1015 / 1015-H Verwendung Zum selektiven Nachweis von Alicyclobacillus sp. aus zuckerhaltigen

Getränken Rezeptur Nach Cerny et al. Empfohlener Membranfilter Weiß mit Gitter, Porengröße 0,45 µm Inkubationsempfehlung 2 – 5 Tage bei 43 – 45 °C Wachstum Alicyclobacillus sp. bilden cremefarbene Kolonien. Das Wachstum von

Begleitflora wird durch den niedrigen pH-Wert und die hohe Inkuba-tionstemperatur gehemmt.

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Chapman – NKS 1050 / 1050-H Verwendung Zum selektiven Nachweis von pathogenen Staphylokokken aus Le-

bensmitteln, pharmazeutischen und kosmetischen Untersuchungsma-terialien

Rezeptur Nach Chapman (1946), modifiziert Empfohlener Membranfilter Weiß mit Gitter, Porengröße 0,45 µm Inkubationsempfehlung 48 Stunden bei 37 °C Wachstum Staphylococcus aureus bildet gelbe Kolonien mit gelbem Hof. Die ho-

he Konzentration an Natriumchlorid hemmt das Wachstum der Be-gleitflora.

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Chinablau – NKS 1060 /1060-H Verwendung Zur Bestimmung der Koloniezahl und zur Differenzierung von Säure-

bildnern und Nicht-Säurebildnern aus Milch und Milchprodukten Rezeptur Nach Brandl und Sobeck-Skal (1963) Empfohlener Membranfilter Weiß mit Gitter, Porengröße 0,45 µm Inkubationsempfehlung 24 – 48 Stunden bei 30 °C Wachstum Eine Säurebildung aus Laktose wird durch blaue Kolonien angezeigt. __________________________________________________________________________________

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Dextrose Trypton – NKS 1070 / 1070-H Verwendung Zur Bestimmung der Koloniezahl mesophiler Mikroorganismen und

zum Nachweis thermophiler Sporenbildner aus Zucker und Lebens-mitteln

Rezeptur Nach ICUMSA Empfohlener Membranfilter Weiß mit Gitter, Porengröße 0,45 µm Inkubationsempfehlung 2 – 3 Tage bei 30 °C (mesophil) oder 1 – 2 Tage bei 55 °C (thermophil) Wachstum „Flat-sour“ Kolonien (Bacillus coagulans) sind grünlich-gelb mit gel-

bem Hof. __________________________________________________________________________________

Orangenserum – NKS 1120 / 1120-H Verwendung Zum Nachweis von acidophilen und acidotoleranten Keimen aus Ge-

tränken und Lebensmitteln Rezeptur Nach Hays (1951) Empfohlener Membranfilter Grün mit Gitter, Porengröße 0,45 µm Inkubationsempfehlung 2 – 3 Tage bei 30 °C Wachstum Durch die Zusammensetzung und den niedrigen pH-Wert können sich

sowohl Hefen und Schimmelpilze, als auch säuretolerante Bakterien entwickeln. Bei anaerober Inkubation kommen auch anspruchsvolle Laktobazillen zur Entwicklung.

__________________________________________________________________________________

VRBD – NKS 1225 / 1225-H Verwendung Zum selektiven Nachweis und zur Koloniezahlbestimmung von Ente-

robacteriaceae aus Lebensmitteln, Wasser und Getränken Rezeptur Nach Mossel et al. (1962), modifiziert Empfohlener Membranfilter Weiß mit Gitter, Porengröße 0,45 µm Inkubationsempfehlung 16 – 24 Stunden bei 37 °C Wachstum Vertreter der Familie Enterobacteriaceae bilden rote Kolonien, gele-

gentlich mit rotem Hof. Unspezifische Begleitkeime wachsen creme-farben bis hell rosa.

__________________________________________________________________________________

Weman – NKS 1240 / 1240-H Verwendung Nachweis schleimbildender Bakterien aus Zucker, zuckerhaltigen Ge-

tränken und Lebensmitteln Rezeptur Nach ICUMSA Empfohlener Membranfilter Grün mit Gitter, Porengröße 0,45 µm Inkubationsempfehlung 2 – 3 Tage bei 30 °C Wachstum Schleimbildner (z.B. Leuconostoc sp.) bilden farblose, wassertropfen-

artige Kolonien. __________________________________________________________________________________

Wismut Sulfit – NKS 1250 / 1250-H Verwendung Zum selektiven Nachweis von Salmonellen aus Wasser, Lebensmitteln

und anderem Untersuchungsmaterial Rezeptur Nach Wilson und Blair (1927), modifiziert Empfohlener Membranfilter Weiß mit Gitter, Porengröße 0,45 µm Inkubationsempfehlung 24 – 48 Stunden bei 37 °C Wachstum Salmonellen bilden dunkelbraune bis schwarze Kolonien, meist mit

hellem Rand und schwarzem Hof („Fischauge“). __________________________________________________________________________________

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Bestellinformation

Die Nährkartonscheiben werden als komplettes Set in 2 verschiedenen Packungsgrößen mit 50 oder

100 Stück angeboten. Die Verpackungseinheiten bestehen aus sterilen Nährkartonscheiben in steri-

len Petrischalen und sterilen, einzeln verpackten Membranfiltern, wie in der Beschreibung auf den

vorangehenden Seiten angegeben, im Durchmesser 50 mm.

Ihre Wünsche hinsichtlich der Membranfiltersorte oder dem alternativen Durchmesser von 47 mm

können wir berücksichtigen. Ebenso sind Membranfilter für die gängigen Membranspendersysteme

verfügbar. Bitte sprechen Sie uns an.

NKS-Typ 50 Stück 100 Stück

Actinomyceten – NKS 1005 1005-H Azid – NKS 1010 1010-H BAT – NKS 1015 1015-H Bier – NKS 1020 1020-H Brettanomyces – NKS 1025 1025-H Caso – NKS 1030 1030-H Colichrom – NKS 1035 1035-H Cetrimid – NKS 1040 1040-H Chapman – NKS 1050 1050-H Chinablau – NKS 1060 1060-H Dextrose Trypton – NKS 1070 1070-H ECD MUG – NKS 1080 1080-H Endo – NKS 1090 1090-H Enterokokken – NKS 1091 1091-H Hefeextrakt – NKS 1081 1081-H Laktose TTC Tergitol – NKS 1092 1092-H Lysin – NKS 1095 1095-H MacConkey – NKS 1098 1098-H Malzextrakt – NKS 1099 1099-H m-FC – NKS 1100 1100-H MRS – NKS 1110 1110-H m-TGE – NKS 1113 1113-H OGY – NKS 1115 1115-H Orangenserum – NKS 1120 1120-H Osmophilen – NKS 1130 1130-H Plate Count – NKS 1140 1140-H Pseudomonas CN – NKS 1145 1145-H R2A – NKS 1155 1155-H Sabouraud – NKS 1160 1160-H Schaufus Pottinger – NKS 1180 1180-H Standard – NKS 1190 1190-H Standard I – NKS 1191 1191-H Standard TTC – NKS 1200 1200-H Teepol – NKS 1210 1210-H Tergitol TTC – NKS 1220 1220-H VRBD – NKS 1225 1225-H Wein – NKS 1230 1230-H Weman – NKS 1240 1240-H Wismut Sulfit – NKS 1250 1250-H Würze – NKS 1260 1260-H

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Herstellen von Agarplatten mit Fertigagar

1 Entnehmen der Flaschen oder des Röhr-

chens aus der Packung.

2 Lockerung der Kappe, um den beim Erhit-

zen entstehenden Druck entweichen zu lassen.

Kappe aber nicht abnehmen!

3 Flasche oder Röhrchen in vorgeheiztes

Wasserbad (90 – 100 °C) stellen.

4 Inkubieren, bis Agar vollständig flüssig ist.

5 Flasche oder Röhrchen aus dem Wasserbad

nehmen und auf ca. 50 °C abkühlen lassen.

6 Agar in sterile Petrischalen gießen. Als

Richtwert gelten 15 – 20 ml für eine 90 mm

und 10 ml für eine 60 mm Schale.

7 Agar verfestigen lassen.

8 Gegossene Platten sollten im Dunkeln je

nach Nährmedientyp bei 4 – 18 °C für maximal

7 – 10 Tage gelagert werden. Um ein Aus-

trocknen der Platten zu verhindern, empfiehlt

sich die Aufbewahrung in Plastikbeuteln.

Gebrauchsfertige Agar- und Flüssignährmedien

Einführung

Unsere Fertignährmedien sind in auto-

klavierbaren und bruchsicheren Polykarbo-

natflaschen (50 ml und 250 ml) oder Glas-

röhrchen (20 ml) gebrauchsfertig steril abge-

füllt. Die Zusammensetzung der verschiede-

nen Nährmedien entspricht, ebenso wie bei

den NKS, den in einschlägigen Normen und

Vorschriften festgelegten Rezepturen.

Während Sie die Flüssigmedien sofort einset-

zen können, müssen die Agarnährmedien

zunächst in einem Wasserbad bei 90 – 100 °C

aufgeschmolzen werden. Anschließend kön-

nen Sie nach Abkühlen auf etwa 50 °C Agar-

platten individuell nach Ihren Bedürfnissen in

verschiedenen Größen und Schichtdicken

gießen (siehe Kasten).

Die Haltbarkeit der Fertignährmedien in un-

geöffneten Gebinden beträgt 6 Monate.

Generell können wir unsere Fertignährmedi-

en in drei verschiedenen Verpackungseinhei-

ten anbieten. Im Standardsortiment sind al-

lerdings nicht alle Nährmedientypen in allen

Verpackungsvarianten verfügbar. Bitte be-

achten Sie die Bestellübersicht auf Seite 20.

Standardpackungen:

- 4 x 250 ml Polykarbonatflaschen

- 25 x 50 ml Polykarbonatflaschen

- 25 x 20 ml Glasröhrchen

Bei Bedarf oder bei größeren Bestellmengen,

sind weitere Verpackungsvarianten möglich.

Bitte sprechen Sie uns an.

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Laktose-Bouillon einfach, mit Durham-Röhrchen

(Artikel 5130)

Positives Ergebnis

1: Escherichia coli: Farbumschlag und erbsengroße

Gasblase

2: Enterobacter aerogenes: Farbumschlag und deutli-

che Gasbildung

Negatives Ergebnis

3: Wachstum, aber kein Farbumschlag

4: Wachstum mit Farbumschlag, aber keine Gasbil-

dung

5: Unbeimpfte Kontrolle

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Qualitätssicherung

Wie bei den Nährkartonscheiben sind auch für

die Fertignährmedien die Herstellungsprozesse

und die Qualitätskontrolle in unser Qualitäts-

managementsystem eingebunden und orien-

tieren sich an den GMP-Richtlinien.

Für die Herstellung der Flüssig- und Agarnähr-

medien kommen nur Komponenten von zertifi-

zierten Lieferanten zum Einsatz. Die Einwaagen

der einzelnen Komponenten werden zur Rück-

verfolgbarkeit mit Lotnummern dokumentiert

und die Einstellung des pH-Werts erfasst.

Durch die sofortige Abfüllung und Sterilisation

ist sichergestellt, dass die Qualität der einzel-

nen Nährmedienansätze weitgehend unbeein-

trächtigt bleibt.

Bei der Endkontrolle der fertigen Produkte

werden Sterilität, Wiederfindungsraten und

gegebenenfalls Farbreaktionen mit Positiv- und

Negativkeimen geprüft. Nur wenn alle Vorga-

ben erfüllt sind, dürfen die Nährmedien unser

Haus verlassen.

Mit unserem chargenbezogenen Qualitätszertifikat, das jeder Packung beiliegt, bestätigen wir Ihnen,

dass unsere Produkte nach unseren Qualitätsstandards geprüft wurden und sie erfüllen.

Sonderanfertigungen sind auch für kleine Mengen möglich

Das Sortiment unserer Fertignährmedien ist auf die Bedürfnisse der Lebensmittel- und

Getränkeindustrie abgestimmt.

Sollten Sie

ein benötigtes Nährmedium in unserem Standardsortiment nicht finden

eine besondere Zusammensetzung oder einen speziellen pH-Wert eines vorhande-

nen Nährmediums benötigen

eine für Sie bessere Verpackungseinheit bevorzugen

dann sprechen Sie uns gerne an. Wir prüfen die Machbarkeit Ihres Wunsches und erstellen

ein unverbindliches Angebot.

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Bestellinformation

Nährmedium Norm 25 x 20ml 25 x 50ml 4 x 250ml

Azid-Glukose-Bouillon, einfach konzentriert *

5140

Azid-Glukose-Bouillon, doppelt konzentriert

Min/TafelWV 5010 (4 x 100 ml)

BAT-Agar mit Membranfilter

4012 (24 x 10 ml)

5012 (4 x 125 ml)

Caseinpepton-Galle-Agar 5230 5231 Caso-Agar DIN EN ISO 9308-1:2000 4020 5020 Caso-Bouillon 4021 Cetrimid-Agar 4025 5021 Colichrom-Agar 4028 5025 DRCM-Bouillon dehydriert

Min/TafelWV 4030 5160

Endo-Agar Min/TafelWV 4040 5030 Enterokokken-Selektiv-Agar nach Slanetz und Bartley

Min/TafelWV EN ISO 7899:2000

5240 5241

Galle-Äsculin-Azid-Agar Min/TafelWV EN ISO 7899:2000

5250 5251

Gelatine-Agar Min/TafelWV 4045 5170 5035 Hefeextrakt-Agar DIN EN ISO 6222:1999 4047 5036 King B-Agar Min/TafelWV

DIN EN ISO 16266:2008 5270 5271

Kristallviolett-Agar 4051 5038 Laktose-Bouillon einfach konzentriert *

5130

Laktose-Bouillon doppelt konzentriert

Min/TafelWV 5040 (4 x 100 ml)

Laktose-Bouillon 6-fach konzentriert

5044

Laktose-TTC-Tergitol-Agar DIN EN ISO 9308-1:2000 5200 5201 Lysin-Agar 4055 5042 Malachitgrün-Bouillon einfach konzentriert *

Min/TafelWV 5150

Malachitgrün-Bouillon doppelt konzentriert

5050 (4 x 100 ml)

Malzextrakt-Agar 4060 5060 MRS-Agar 4061 5061 MRS-Bouillon 4062 5062 MRS-Bouillon mit Indikator

5063

Nähragar Min/TafelWV 4080 5080 Nährbouillon 4090 5081 Orangenserum-Agar 4095 5085 Orangenserum-Agar mit Indikator

4096 5086

Plate Count-Agar 4100 5090 Pseudomonas CN-Agar DIN EN ISO 16266:2008 5280 5281 R2A-Agar EP, USP 4125 5095 Sabouraud-Agar EP, USP 4130 5100 Standard-Agar 4135 5101 Tryptophan-Peptonwasser Min/TafelWV

DIN EN ISO 9308-1:2000 5220

(25 x 10 ml)

Würze-Agar 4150 5110

* mit Membranfilter

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Filtrationsgeräte und Zubehör

Filtrationsgeräte

Das Sortiment unserer Filtrationsgeräte und des Zubehörs ist auf den Routineeinsatz im mikrobiolo-

gischen Labor abgestimmt und erleichtert Ihnen so Ihre täglichen Arbeiten.

Unsere Edelstahlfiltrationsgeräte sind zum Beispiel mit selbstdichtenden

Aufsätzen ausgestattet. Ein Verriegeln von Trichteraufsatz und Unterteil des

Filtrationsgerätes ist daher nicht nötig. Das spart Zeit und minimiert zusätz-

lich die Gefahr, die Filtrationsmembran durch Scherkräfte zu beschädigen.

Das Trichtervolumen von 100 ml ist für die meisten Anwendungen

ausreichend. Durch einen 2-Wege Teflonhahn kann ein angelegtes Vakuum

an- und abgeschaltet werden. Darüber hinaus lassen sich die Filtrationsge-

räte komplett zerlegen. Das erleichtert Reinigung und Sterilisation erheb-

lich.

Neben dem Einzelplatz-Filtrationsgerät bieten wir

auch Absaugleisten aus Edelstahl an. Wegen der ge-

ringen Abmessungen eignet sie sich sehr gut für das

Arbeiten in Werkbänken. Bei sehr großem Probeauf-

kommen kann eine 3-fach Absaugleiste durch einfa-

ches Anschließen einer zweiten Einheit mittels einer

Schnellverschlusskupplung zu einer 6-fach Leiste er-

weitert werden. Natürlich können auch die Absaug-

leisten zur Reinigung komplett zerlegt werden.

Für Labore mit geringem Probeaufkommen oder Ein-

steiger in die eigene mikrobiologische Qualitätskontrol-

le haben wir einen kompletten Filtrationsarbeitsplatz

zusammengestellt. Er besteht aus einem Filtrationsge-

rät mit Saugflasche und Stopfen, einer Woulff’schen

Flasche mit Manometer und Regulierungsventil, einer

kleinen Vakuumpumpe und den notwendigen

Schlauch- und Verbindungsstücken.

Bei größerem Probeaufkommen können wir Ihnen Ihren Bedürfnissen entsprechende Arbeitsplätze

z. B. mit Absaugleisten, großen Saugflaschen oder stärkeren Vakuumpumpen anbieten. Bitte spre-

chen Sie uns darauf an.

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Zubehör

Eine Besonderheit ist unsere Aufrollpinzette. Mit ihrer Hilfe können Membranfilter nach der Filtrati-

on sehr einfach zusammengerollt und durch enghalsige Flaschen in Flüssigmedien überführt werden.

Die ideale Ergänzung zu den Nährkartonscheiben sind die Ampullen mit 3,5ml sterilem Wasser. Sie

enthalten genau das erforderliche Volumen, um die Nährkartonscheiben optimal zu befeuchten. Der

dabei entstehende Überschuss an Flüssigkeit ist erforderlich, um die bei der Inkubation verdunsten-

de Menge Wasser zu ergänzen und die Nährkartonscheibe feucht zu halten. Nur so wird sicherge-

stellt, dass die gelösten Nährstoffe den Zellen auf der Membranoberfläche zum Wachstum zur Verfü-

gung stehen.

Eine weitere Möglichkeit, NKS mit sterilem Wasser zu be-

feuchten, bietet der Einsatz einer Selbstfüller-

Dosierspritze. Sie ist stufenlos bis maximal 5 ml einstellbar

und besitzt einen Luer-Lock-Anschluss, an den ein steriler

Spritzenvorsatzfilter aufgedreht werden kann. So wird bei

jedem Hub steriles Wasser in dem eingestellten Volumen

auf die Kartonscheibe dosiert und gleichzeitig über einen

Schlauch aus einem Vorratsgefäß Wasser in die Spritze

nachgefüllt. Ideal bei einer großen Anzahl von Proben.

Petrischalen mit einem Durchmesser von 60mm zum Ausgießen von Agar, autoklavierbare Flaschen

und Röhrchen und eine handliche UV-Lampe für den Fluoreszenz-Nachweis, z.B. bei den ECD-MUG-

NKS oder den Cetrimid-Nährboden runden unser Zubehör-Sortiment ab

Bestellinformation

Geräte / Zubehör Beschreibung Artikelnummer

Vakuum-Filtrationsgerät aus Edelstahl, 100 ml Aufsatz, für 50 mm Membranfilter, selbstdichtend

6010

Vakuum-Filtrationsgerät aus Glas, 250 ml Aufsatz, für 50 mm Membranfilter 6030 Mikrobiologischer Ar-beitsplatz

komplett mit M&S Vakuum-Filtrationsgerät 6010, Saugfla-sche, Woulff’scher Flasche, Vakuumpumpe und Schlauch-set

6040

M&S Vakuum-Absaugleiste

dreifach, aus Edelstahl, mit 100 ml Aufsätzen, für 50 mm Membranfilter, selbstdichtend

6090

M&S Petrischalen steril, AD Deckel: 60 mm, ID Boden: 55 mm, H: 14 mm, 10 x 20 Stück

6060

Glasröhrchen Volumen: 28 ml, mit Schraubkappe und Dichtung, autoklavierbar, 50 Stück

6070

Polykarbonatflaschen Volumen 250 ml, mit Schraubkappe und Dichtung, autoklavierbar, 24 Stück

6080

Steriles Wasser Ampullen mit je 3,5 ml sterilem vollentsalzten Wasser, 5 x 10 Stück

6105

Dosierspritze Selbstfüllerspritze, stufenlos bis 5 ml einstellbar, Luer-Lock-Anschluss, autoklavierbar

6100

UV-Lampe 366 nm für die ECD-Methode, komplett mit Batterie 6110 Spezialpinzette zum einfachen Aufrollen von Membranfiltern und Über-

führen in Röhrchen und Flaschen 6120

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Abkürzungsverzeichnis:

APHA American Public Health Association

DEV Deutsches Einheitsverfahren

DIN Deutsche Industrie Norm

EN Europäische Norm

EP Europäische Pharmakopöe

ICUMSA International Commission for Uniform Methods of Sugar Analysis

ISO International Standardisation Organisation

Min/TafelWV Mineral- und Tafelwasser-Verordnung

MUG 4-Methylumbelliferyl-ß-D-Glucuronid

NKS Nährkartonscheibe

nm Nanometer

TTC 2,3,5-Triphenyltetrazoliumchlorid

USP United States Pharmakopöe

UV Ultraviolett

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Dr. Möller & Schmelz GmbH

Robert-Bosch-Breite 15

D-37079 Göttingen

Deutschland

Tel +49 (0)551 6 67 08

Fax +49 (0)551 6 88 95

info@dr-moeller-und-schmelz.de

www.dr-moeller-und-schmelz.de 08/13