Règles Internationales Reglas Internacionales para Análisis ......Reglas Internacionales para...

Reglas Internacionales para Análisis de Semillas2021

Incluye cambios y correcciones editoriales adoptadas en la Reunión General Ordinaria 2020, en linea

Vigente desde 1 Enero 2021

Capítulo 7: Análisis de sanidad de semillas

Internationale Vorschriften für die Prüfung von Saatgut 2021

Inklusive Änderungen und redaktionelle Korrekturen verabschiedet auf der online durchgeführten ordentlichen Generalversammlung 2020

Gültig ab 1. Januar 2021

Kapitel 7: Gesundheitsprüfung von Saatgut

Règles Internationales pour les Essais de Semences 2021

Inclus les changements de règles et corrections éditoriales adoptées lors de la réunion annuelle générale 2020, en ligne

Effectives au 1er janvier 2021

Chapitre 7 : L'analyse sanitaire de semences

International Rules for Seed Testing 2021

Including changes and editorial corrections adopted at the online Ordinary General Meeting 2020

Effective from 1 January 2021

Chapter 7: Seed health testing

International Rules for Seed Testing, Chapter 7, i–7-6 (14)https://doi.org/10.15258/istarules.2021.07


Reglas Internacionales para Análisis de Semillas

ii

Nota sobre el uso de traducciones

La versión electrónica de las Reglas Internacionales para el Análisis de Semillas incluye las versiones Inglés, Francés, Alemán y Español. Si hay preguntas sobre la interpretación de las Reglas ISTA, la versión en inglés es la versión definitiva.

Publicado porInternational Seed Testing Association (ISTA)Zürichstr. 50, CH-8303 Bassersdorf, Suiza

© 2020 International Seed Testing Association (ISTA)

En línea ISSN 2310-3655

Todos los derechos reservados. Ninguna parte de esta publicación puede reproducirse, almacenarse en ningún sistema de recuperación de datos o trasmitirse de ninguna forma ni por ningún medio, ya sea electrónico, mecánico, fotocopiado, grabado o de otro modo, sin el permiso previo y por escrito de ISTA.

ii Gültig ab 1. Januar 2021

Internationale Vorschriften für die Prüfung von Saatgut

Herausgegeben von der:Internationalen Vereinigung für Saatgutprüfung (ISTA)Zürichstr. 50, 8303 Bassersdorf, Schweiz


Online ISSN 2310-3655

Titel der englischen Originalausgabe: International Rules for Seed Testing

Alle Rechte vorbehalten. Kein Teil dieses Werkes darf in irgendwelcher Form oder durch irgendwelchem Verfahren, sei es elektronisch, mechanisch, durch Fotokopie oder Tonauf-nahme oder durch irgendein anderes Verfahren reproduziert, gespeichert oder verbreitet werden, ohne vorherige schriftliche Genehmigung der Internationalen Vereinigung für Saatgutprüfung.

Anmerkung zur Benutzung der Übersetzungen

Die elektronische Version enthält die Englische, Französische, Deutsche und Spanische Version der ISTA-Vorschriften. Bei irgendwelchen Fragen bezüglich der Interpretation der ISTA-Vorschriften ist die englische Version die massgebliche Version.

ii Effectives 1er janvier 2021

Règles Internationales pour les Essais de Semences

Éditées par :L’Association Internationale d’Essais de Semences (ISTA)Zürichstr. 50, 8303 Bassersdorf, Suisse

© 2020 par l’Association Internationale d’Essais de Semences (ISTA)


Titre de l’édition originale anglaise : International Rules for Seed Testing

Tous droits réservés. Aucune partie de cette publication ne peut être reproduite, stoc-kée dans le système de récupération ou être transmise sous aucune forme ou par aucun moyen, électronique, mécanique, photocopiant, enregistrant ou autrement, sans permis-sion antérieure par écrit de l’ISTA.

Remarque sur l’utilisation des traductions

La version électronique des règles inclue les versions en Anglais, en Français, en Allemand et en Espagnole. Pour toute question d’interprétation des règles, seule la version anglaise fait foi.

International Rules for Seed Testing

Effective 1 January 2021ii

Published byThe International Seed Testing Association (ISTA)Zürichstr. 50, CH-8303 Bassersdorf, Switzerland



All rights reserved. No part of this publication may be reproduced, stored in any retrieval system or transmitted in any form or by any means, electronic, mechanical, photocopying, recording or otherwise, without prior permission in writing from ISTA.

Note on the use of the translations

The electronic version of the International Rules for Seed Testing includes the English, French, German and Spanish versions. If there are any questions on interpretation of the ISTA Rules, the English version is the definitive version.



iii

Índice

Índi

ce

Indice

Preface to the 2021 Edition of the ISTA Rules .. ......... v

Capítulo 7: Análisis de sanidad de semillas .. ........... 7-17.1 Objeto .. .................................................................. 7-17.2 Definiciones .. ......................................................... 7-1

7.2.1 Sanidad de las semillas .. ................................. 7-17.2.2 Pretratamiento .. ............................................... 7-17.2.3 Tratamiento de semillas .. ................................ 7-17.2.4 Programa de Validación ISTA para

Métodos de Sanidad de Semillas .. ........................ 7-17.3 Principios generales .. ............................................. 7-17.4 Procedimientos .. .................................................... 7-1

7.4.1 Muestra de trabajo .. ......................................... 7-17.4.2 Tratamiento de semillas .. ................................ 7-27.4.3 Almacenamiento de muestras .. ........................ 7-27.4.4 Instrucciones específicas .. ............................... 7-2

7.5 Cálculo y expresión de los resultados .. ................. 7-27.6 Informe de los resultados .. .................................... 7-2Tabla 7A. Métodos oficiales de ISTA para análisis de

sanidad de semillas .. 7-3



iii

Inhaltsverzeichnis

Inha

ltsve

rzei

chni

s

Inhaltsverzeichnis


Kapitel 7: Gesundheitsprüfung von Saatgut .. ......... 7-17.1 Gegenstand .. .......................................................... 7-17.2 Begriffe .. ................................................................ 7-1

7.2.1 Saatgutgesundheit .. ......................................... 7-17.2.2 Vorbehandlung .. .............................................. 7-17.2.3 Saatgutbehandlung .. ........................................ 7-17.2.4 ISTA-Validierungs-Programm für

Methoden zur Gesundheitsprüfung von Saatgut .. 7-17.3 Allgemeine Grundsätze .. ...................................... 7-17.4 Verfahren .. ............................................................. 7-1

7.4.1 Untersuchungsprobe ........................................ 7-17.4.2 Saatgutbehandlung .. ........................................ 7-27.4.3 Probenlagerung .. ............................................. 7-27.4.4 Besondere Richtlinien .. ................................... 7-2

7.5 Berechnung und Wiedergabe der Ergebnisse .. ...... 7-27.6 Berichterstattung der Ergebnisse .. ......................... 7-2Tabelle 7A. Offizielle ISTA-Methoden zur

Gesundheitsprüfung vom Saatgut .. 7-3

Effectives 1er janvier 2021


iii

Som

mai

re

Sommaire

Sommaire


Chapitre 7 : L’analyse sanitaire des semences .. ...... 7-17.1 Objet .. .................................................................... 7-17.2 Définitions .. ........................................................... 7-1

7.2.1 État sanitaire des semences .. ........................... 7-17.2.2 Prétraitement .. ................................................. 7-17.2.3 Traitement .. ..................................................... 7-17.2.4 Programme de Validation de Méthode

d’Analyse Sanitaire des Semences de l’ISTA .. ..... 7-17.3 Principes généraux .. .............................................. 7-17.4 Procédures .. ........................................................... 7-1

7.4.1 Échantillon de travail .. .................................... 7-17.4.2 Traitement .. ..................................................... 7-27.4.3 Stockage d’échantillon .. .................................. 7-27.4.4 Consignes spécifiques .. ................................... 7-2

7.5 Calcul et expression des résultats .. ........................ 7-27.6 Indication des résultats .. ........................................ 7-2Tableau 7A. Méthodes officielles d’analyse sanitaire

de semences de l’ISTA .. 7-3

iii

Contents

Con

tent

s


Effective 1 January 2021

Contents

Con

tent

s

Contents


Chapter 7: Seed health testing .. ................................ 7-17.1 Object .. .................................................................. 7-17.2 Definitions .. ........................................................... 7-1

7.2.1 Seed health .. .................................................... 7-17.2.2 Pretreatment .. .................................................. 7-17.2.3 Seed treatment .. ............................................... 7-17.2.4 ISTA Seed Health Method Validation

Programme .. .......................................................... 7-17.3 General principles .. ................................................ 7-17.4 Procedures .. ........................................................... 7-1

7.4.1 Working sample .. ............................................ 7-17.4.2 Seed treatment .. ............................................... 7-27.4.3 Sample storage .. .............................................. 7-27.4.4 Specific directions .. ......................................... 7-2

7.5 Calculation and expression of results .. .................. 7-27.6 Reporting results .. .................................................. 7-2Table 7A. ISTA official seed health testing methods .. 7-3



v

Preface to the 2021 Edition of the ISTA Rules

Since 2014, the International Rules for Seed Testing (ISTA Rules) are primarily available in electronic format only. The ISTA Rules can be downloaded as a complete PDF file or as individual chapters from:

http://www.ingentaconnect.com/content/ista/rules.If required, users of the ISTA Rules can print their own copies. For further information on the ISTA Rules, see:

http://www.seedtest.org/rules.The electronic version includes the English, French, German and Spanish versions of the ISTA Rules. If there are any questions on interpretation of the ISTA Rules, the English version is the definitive version.

Seed health testing methods

Previously, the seed health testing methods were published as a separate Annexe to Chapter 7 of the ISTA Rules. They are now available as separate method sheets from the ISTA web site at:

http://www.seedtest.org/seedhealthmethods

Details of changes

The 2021 changes are editorial corrections or Rules changes adopted at the online Ordinary General Meeting held in June 2020. Edits were made in Adobe InDesign by Vanessa Sutcliffe of HeartWood Editorial (www.heart-woodeditorial.co.uk).

The changes in the text content from the previous edition of the ISTA Rules are listed below. They can be displayed with yellow highlight boxes as a ‘layer’ over the English version within the electronic copy, with comments on what has changed.

For the previous history of amendments to the ISTA Rules, see the Prefaces for 2003 to 2020 on the ISTA website.

Ernest Allen, ISTA Rules Committee Chair

Susan Alvarez, ISTA Rules Committee Vice-Chair

ISTA Secretariat



v








Details of changes






ISTA Secretariat



v








Details of changes






ISTA Secretariat

v


Pref

ace

to th

e 20

21 E

ditio

n of

the

ISTA

Rul

es









http://www.seedtest.org/seedhealthmethods.

Details of changes






ISTA Secretariat

http://www.ingentaconnect.com/content/ista/rules

http://www.seedtest.org/rules













vi

Changes to the ISTA Rules for 2021

Introduction

I-1: Health and Safety statement added. Statement re-viewed and approved by ECOM and Rules Committee.

Chapter 1

1.5.2.2: Result of changes approved in Chapter 2 during OGM16.

1.5.2.2: Clarification that authorities are not required for reporting.

1.5.2.6: Result of proposal submitted to Germination Committee by ISTA Accreditation Department. Clar-ity in section 5.9 that only percentage germination is reported when germination test is terminated due to predetermined germination level.

1.5.2.17.2, 1.5.2.17.3 and 1.5.2.17.4: Reference for 5.8.2 replaces the current erroneous reference of 5.8.1.

1.5.2.21, 1.5.2.21.2 and 1.5.2.21.3: Result of changes approved in Chapter 19 during OGM18.

Chapter 2

2.8: Result of nomenclature changes to the ISTA List of Stabilised Plant Names that have been incorporated into Table 2C. Previous cross references were not re-moved prior to the printing of the 2020 Rules. Pre-vious cross references will be removed in the 2021 Rules and the last sentence of the current version will be replaced.

Table 2C Part 1: Result of approved nomenclature changes to the ISTA List of Stabilised Plant Names.

Chapter 3

3.7: Result of changes approved in Chapter 2 during OGM16.

3.7: Clarification that authorities are not required for reporting.

Table 3A: Deletion of Poa pratensis varieties that are no longer being traded. Proposal approved by majority vote in Purity Committee.

Chapter 4

4.2.1: Result of changes approved in Chapter 4 during OGM18.

4.2.2: ‘Orobanchaceae’ replaced with ‘dust-like seeds’ to harmonise with other changes related to such seeds. Addition of ‘indistinguishable species’ to distinguish those seeds that are costly to or not reliably retrieved

in the complete test quantity. Proposal approved by majority vote in Purity Committee.

4.2.4: ‘Orobanchaceae’ replaced with ‘dust-like seeds’ and ‘very expensive seed’ replaced with ‘small seed lots’ to harmonise with other changes related to such seeds. A reduced test is allowed in the Rules for simi-lar species searches. Proposal approved by majority vote in Purity Committee.

Chapter 5

5.2.7.2: Result of validation study carried out in Ger-mination Committee to change evaluation of roots for Helianthus annuus, allowing for secondary roots when the primary root is defective. Proposal approved by Germination Committee.

5.6.2.4 and 5.6.3.1: Clarity that LED lights can be used for germination. Proposal supported by Germination Committee.

5.9: Proposal submitted to Germination Committee by ISTA Accreditation Department. Clarity that only percentage germination is reported when germination test is terminated due to predetermined germination level.

Table 5A Part 1: Result of validation study conducted on Brassica napus to determine which temperature re-quirements for germination promoted higher normal seedling development and enhanced testing reproduc-ibility among labs. Proposal supported by Germina-tion Committee.

Chapter 7

Method 7-001a, -001b, -002a, -002b, -003 -005, -006, -008, -010, -011, -012, -013a, -013b, -014, -015 and -016: Increasing harmonisation for sample and subsample size throughout Seed Health Methods. Proposal approved and supported by Seed Health Committee.

Methods 7-001a, -001b, -002a, -002b, -007 and -009: Clarifying instructions for preparing hy-pochlorite solutions for pretreatment as prescribed in Methods.

Method 7-004, -007, -019a, -019b, -020, -021, -022, -023, -024, -025, -026, -027, -028, -029, -030, -031 and -032: Increasing harmonisation for sample size with other methods to detect fungi. Proposal approved and supported by Seed Health Committee.

Methods 7-005, -006, -008, -014, -016, -022 and -032: Clarifying instructions for preparing hypochlo-rite solutions for pretreatment as prescribed in Meth-ods. Adding use of hypochlorite solutions for methods

vi Gültig ab 1. Januar 2021


Introduction


Chapter 1






Chapter 2



Chapter 3




Chapter 4





Chapter 5





Chapter 7






vi Effectives 1er janvier 2021


Introduction


Chapter 1






Chapter 2



Chapter 3




Chapter 4





Chapter 5





Chapter 7







Pref

ace

to th

e 20

21 E

ditio

n of

the

ISTA

Rul

esInternational Rules for Seed Testing

Effective 1 January 2021vi

Introduction


Chapter 1






Chapter 2



Chapter 3




Chapter 4





Chapter 5





Chapter 7








vii

similar to those already approved in Rules. Proposal supported by Seed Health Committee.

Method 7-007: Revision requested by Seed Health Committee to make description of Alternaria linicola more informative.

Method 7-019a, -019b and -020: Addition of safety considerations when using ethidium bromide. Pro-posal supported by Seed Health Committee.

Method 7-019a and -020: Clarity that alternative chemicals other than ethidium bromide may be used for this method. Proposal supported by Seed Health Committee.

Method 7-021, -030 and -031: Clarity that alternative chemicals other than ethidium bromide may be used for this method. Addition of safety considerations when using ethidium bromide. Proposal supported by Seed Health Committee.

Chapter 9

9.2.4.2, 9.2.5.4, 9.2.5.6, 9.3.1.4, 9.3.1.5.1, 9.3.1.5.2, 9.3.1.5.3, 9.3.1.5.4, 9.3.1.5.5, 9.3.2.4.3, 9.3.2.8 and 9.3.2.9: Review of Chapter 9 with recommendation that some wording changed to improve clarity on when a laboratory must perform an action and when it is suggested that the laboratory should perform the action (but would not be found in violation during an ISTA audit if they used a different but acceptable alternative process). Proposal approved by Moisture Committee.

9.2.4.3: Clarification of definition of appropriate con-tainers for use in oven moisture testing. Review of Chapter 9 by Moisture Committee.

9.2.4.6 and 9.2.5.4: Use of singular ‘mesh’ instead of misleading ‘meshes’. Proposal approved by Moisture Committee.

9.2.5.2: Section re-ordered and modified to improve clarity and to avoid confusion about differences in how many working samples are drawn depending on whether seeds are whole or ground.

Table 9A Part 2: Moisture method for Carica papaya included in table. Proposal made following validation studies carried out within Moisture Committee.

Chapter 15

15.8.2.8, 15.8.3.6 and 15.8.4.6: Reference for 5.8.2 re-places the current erroneous reference of 5.8.1.

Table 15B: Clarification of assessment of 2 mm radi-cle; consistency in description of germination media for radicle emergence test for Zea mays and Triticum aestivum subsp. aestivum; all Latin names expressed according to ISTA List of Stabilised Plant Names. Ad-ditional text clarifies measurement of 2mm in radicle emergence test for these species and specifies that as-sessments should be made by eye. All validation for radicle emergence has been done without magnifica-tion and has achieved repeatability and reproducibil-ity. Proposal supported by Vigour Committee.



vii






Chapter 9






Chapter 15





vii






Chapter 9






Chapter 15



vii


Pref

ace

to th

e 20

21 E

ditio

n of

the

ISTA

Rul

es








Chapter 9






Chapter 15





7-1

Capítulo 7: Análisis de sanidad de semillas

7.1 ObjetoEl objeto de un análisis de sanidad de semillas es determi-nar el estado de sanidad de una muestra y, por inferencia, la del lote de semillas.

El análisis de sanidad de semillas es importante por cua-tro razones:a. El inóculo transmitido por las semillas puede dar lugar

a un desarrollo potencial de la enfermedad en el campo y reducir el valor comercial del cultivo.

b. Los lotes importados de semillas pueden introducir en-fermedades en nuevas regiones. Por lo tanto, los análi-sis pueden ser necesarios para cumplir con los requisi-tos de cuarentena.

c. El análisis de sanidad de semillas puede diagnosticar las causas de una germinación o implantación a campo deficientes y, por lo tanto, complementar los análisis de germinación.

d. Los resultados de los análisis de sanidad de semillas pueden indicar la necesidad de hacer el(los) tratamien-to(s) de lote(s) de semillas para erradicar los patógenos transmitidos por la semilla o para reducir el riesgo de transmisión de enfermedades.

7.2 Definiciones7.2.1 Sanidad de las semillas

La sanidad de las semillas se refiere principalmente a la presencia o ausencia de organismos que provoquen enfer-medades, tales como hongos, bacterias y virus y plagas animales incluyendo nematodos e insectos, pero también pueden estar involucradas condiciones fisiológicas como la carencia de oligoelementos.

7.2.2 Pretratamiento

Es todo tratamiento físico o químico realizado en el labo-ratorio sobre la muestra de trabajo, que precede a la incu-bación, realizado sólo para facilitar el análisis.

7.2.3 Tratamiento de semillas

Ver 2.2.12. Para el análisis de sanidad, un lote de semillas puede tratarse con el fin de controlar los patógenos de las plantas o las plagas de insectos o corregir las deficiencias de oligoelementos.

7.2.4 Programa de Validación ISTA para Métodos de Sanidad de Semillas

Antes de ser publicados en las Reglas Internacionales para Análisis de Semillas, los análisis de sanidad de semi-llas de ISTA (nuevos o equivalentes) se validan. Los prin-cipios y factores que deben considerarse en la validación de métodos para la detección de patógenos transmitidos por semillas se describen en el ISTA Technical Guidelines for Organising and Analysing Results of Proficiency Tests (PT) and Interlaboratory Tests for Validation of Methods (CT).

7.3 Principios generalesEl análisis de sanidad de semillas se debe realizar usando métodos y equipos que hayan sido probados previamente para garantizar su idoneidad. Existen diferentes métodos de análisis disponibles que varían en sensibilidad y repro-ducibilidad y en la cantidad de entrenamiento y equipo que requieren. El método usado dependerá del patógeno o de la condición a ser investigada, de la especie de semilla que se trate y del propósito del análisis. La selección del método y la evaluación de los resultados requieren conocimiento y experiencia de los métodos disponibles. Se determinan las condiciones especificadas por el remitente como presencia o ausencia de organismos que provoquen enfermedades, plagas y condiciones fisiológicas desfavorables con tanta exactitud como el método empleado lo permita.

7.4 Procedimientos7.4.1 Muestra de trabajo

Dependiendo del método de análisis, se puede usar como muestra de trabajo a toda la muestra a enviar al laborato-rio o a una parte de ella. La muestra debe ser envasada y remitida de manera que no se altere el estado de sanidad de las semillas.

Excepcionalmente se podrá requerir una muestra a enviar mayor que la especificada en 2.8 y, en tales casos, deberá informarse al respecto a quien tome las muestras. Cuando la muestra de trabajo sea una parte de la muestra a enviar, la reducción debe llevarse a cabo conforme a 2.5.2 tomando las precauciones pertinentes para evitar la conta-minación cruzada.

Normalmente, la muestra de trabajo no debe ser infe-rior a la especificada en la descripción del método.



7-1

Kapitel 7: Gesundheitsprüfung von Saatgut

7.1 GegenstandDer Gegenstand einer Prüfung der Saatgutgesundheit ist die Bestimmung des Gesundheitszustandes einer Saatgutprobe und der durch die Probe repräsentierten Saatgutpartie.

Die Gesundheitsprüfung des Saatgutes ist aus vier Grün-den bedeutsam:a. Samenbürtige Krankheitserreger können eine fort-

schreitende Krankheitsentwicklung im Feldbestand hervorrufen und den wirtschaftlichen Wert des Ertra-ges herabsetzen.

b. Durch importierte Saatgutpartien können Krankheiten in neue Regionen eingeführt werden. Untersuchungen, um den Quarantäneerfordernissen zu genügen, können dafür notwendig sein.

c. Die Prüfung der Saatgutgesundheit kann die Keim-lingsbeurteilung erleichtern und die Gründe für eine schlechte Keimung oder einen schlechten Feldaufgang aufzeigen und so die Bestimmung der Keimfähigkeit ergänzen.

d. Die Ergebnisse der Prüfung der Saatgutgesundheit können bzw. sollen auf die Notwendigkeit der Durch-führung einer Saatgutpartiebehandlung(en) weisen, um samenbürtige Pathogene zu vernichten oder das Risiko einer Krankheitsübertragung zu reduzieren.

7.2 Begriffe7.2.1 Saatgutgesundheit

Die Gesundheit des Saatgutes bezieht sich primär auf das Vorhandensein oder das Fehlen von krankheitsverur-sachenden Organismen, wie Pilze, Bakterien, Viren und tierische Schädlinge, einschließlich Nematoden und In-sekten, aber auch physiologische Schäden, wie Mangel an Spurenelementen, können einbezogen werden.

7.2.2 Vorbehandlung

Eine physikalische oder chemische Laborbehandlung der Untersuchungsprobe vor der Inkubation zur Erleichterung der Prüfung.

7.2.3 Saatgutbehandlung

Siehe 2.2.12. Für die Gesundheitsprüfung von Saatgut ist es erlaubt, dass eine Saatgutpartie zur Beherrschung von

Phytopathogenen oder Insektenbefall sowie zur Beseiti-gung von Spurenelementmangel behandelt ist.

7.2.4 ISTA-Validierungs-Programm für Methoden zur Gesundheitsprüfung von SaatgutVor der Veröffentlichung in den Internationalen Vorschriften für die Prüfung von Saatgut werden die neuen oder äquivalenten Methoden zur Gesundheitsprüfung von Saatgut validiert. Die Prinzipien und Faktoren, die bei der Validierung von Methoden für die Bestimmung samen-bürtiger Krankheitserreger berücksichtigt werden müssen, sind im ISTA Technical Guidelines for Organising and Analysing Results of Proficiency Tests (PT) and Interlaboratory Tests for Validation of Methods (CT).

7.3 Allgemeine Grundsätze Die Prüfung der Saatgutgesundheit sollte unter Verwen-dung von getesteten Methoden und Ausrüstung durch-geführt werden, um abzusichern, dass sie für den Zweck geeignet sind. Verschiedene Untersuchungsmethoden sind möglich, die sich in Empfindlichkeit und Reproduzier-barkeit sowie den Anforderungen an Erfahrung und Aus-rüstung unterscheiden. Welche Methode verwendet wird, hängt vom Krankheitserreger oder den Untersuchungs-bedingungen, der Art des Saatgutes und dem Zweck der Untersuchung ab. Die Wahl der Methode und Auswertung der Ergebnisse erfordert Kenntnis und Erfahrung bezüg-lich der verfügbaren Methoden. Das Vorhandensein oder Fehlen von Krankheitsorganismen, Schädlingen und phy-siologischen Schäden, angegeben durch den Einsender, wird bestimmt, so genau wie die Methode es erlaubt.

7.4 Verfahren7.4.1 Untersuchungsprobe

Die gesamte Einsendungsprobe oder ein Teil von ihr kann je nach Untersuchungsmethode als Untersuchungs probe verwendet werden. Die Probe sollte so verpackt und ein-gereicht werden, dass sich ihr Gesundheitszustand nicht ändert.

Ausnahmsweise darf eine Einsendungsprobe, die grö-ßer als in Vorschrift 2.8 beschrieben ist, gefordert werden und in solchen Fällen muss der Probenehmer entsprechend instruiert werden.

Wird als Untersuchungsprobe nur ein Teil der Einsen-dungsprobe benötigt, muss die Teilung gemäß Vorschrift



7-1

Chapitre 7 : L’analyse sanitaire des semences

7.1 ObjetL’objet d’une analyse sanitaire de semences est de déter-miner l’état sanitaire d’un échantillon de semences, et par déduction celui du lot de semences.

Les analyses sanitaires des semences sont importantes pour quatre raisons :a. L’inoculum transmis par les semences peut provoquer

le développement progressif d’une maladie en culture et réduire la valeur marchande de la récolte.

b. Les lots de semences importés peuvent introduire des maladies dans de nouvelles régions. Les analyses pour répondre aux exigences de la quarantaine peuvent donc être nécessaires.

c. L’analyse sanitaire des semences peut élucider l’éva-luation de plantules et les causes de mauvaise germi-nation ou d’une mauvaise levée au champ et compléter ainsi l’analyse de germination.

d. Les résultats de l’analyse sanitaire des semences peuvent indiquer la nécessité de mettre en œuvre/réali-ser des traitements de lot de semences afin d’éradiquer les pathogènes transmis par les semences ou de réduire le risque de transmission de la maladie.

7.2 Définitions7.2.1 État sanitaire des semences

L’état sanitaire des semences se réfère principalement à la présence ou à l’absence des organismes provoquant des maladies, tels que les champignons, bactéries et virus, ainsi que des parasites animaux, y compris des nématodes et des insectes, mais les conditions physiologiques telles que l’insuffisance d’oligoélément peuvent être impliquées.

7.2.2 Prétraitement

Prétraitement se réfère à tout traitement physique ou chimique effectué au laboratoire sur l’échantillon de tra-vail qui précède l’incubation, réalisé uniquement pour faciliter l’essai.

7.2.3 Traitement

Voir 2.2.12. En analyse de la qualité sanitaire des se-mences, un lot de semences peut être traité dans le but de contrôler les pathogènes de plantes ou les insectes ou pour corriger les manques d’oligoéléments.

7.2.4 Programme de Validation de Méthode d’Analyse Sanitaire des Semences de l’ISTAAvant la publication dans les Règles Internationales pour les Essais de Semences, les méthodes d’analyse sanitaire de l’ISTA (nouvelles ou équivalentes) doivent être vali-dées. Les principes et les facteurs qui devraient être consi-dérés dans la validation des méthodes pour la détection des pathogènes transmis par les semences sont décrits dans le ISTA Technical Guidelines for Organising and Analysing Results of Proficiency Tests (PT) and Interlaboratory Tests for Validation of Methods (CT).

7.3 Principes générauxL’analyse sanitaire des semences devrait être réalisée en utilisant des méthodes et un équipement qui a été testé pour assurer qu’ils sont adaptés pour ce but. Différentes méthodes d’analyse sont disponibles, variant dans la sen-sibilité et la reproductibilité et au niveau de la formation et de l’équipement exigés. La méthode employée dépendra du pathogène ou de la condition à étudier, des espèces de semences, et du but de l’essai. Le choix de la méthode et l’évaluation des résultats exigent la connaissance et l’expé-rience des méthodes disponibles. La présence ou l’absence d’organismes de la maladie, de parasites et de conditions physiologiques délétères indiqués par l’expéditeur est esti-mée aussi exactement que la méthode employée le permet.

7.4 Procédures7.4.1 Échantillon de travail

L’échantillon soumis entier, ou une proportion de celui-ci, selon la méthode d’analyse, peut être employé comme échantillon de travail. L’échantillon devrait être emballé et soumis de façon à ne pas modifier l’état sanitaire des semences.

Exceptionnellement, un échantillon soumis plus grand que ce qui est prescrit en 2.8 peut être exigé et dans ce cas l’échantillonneur sera informé en conséquence.

Quand une partie de l’échantillon soumis est exigée comme échantillon de travail, la réduction sera effectuée selon 2.5.2, en prenant des précautions appropriées pour éviter la contamination croisée.

Normalement l’échantillon de travail ne sera pas infé-rieur à ce qui est indiqué dans la méthode décrite.

Des répétitions contenant un nombre indiqué de se-mences, s’il y a lieu, seront prises au hasard dans un sous-échantillon après mélange complet.

7-1


Cha

pter

7: S

eed

heal

th te

stin

g




7.1 ObjectThe object of a seed health test is to determine the health status of a seed sample, and by inference that of the seed lot.

Health testing of seed is important for four reasons:a. Seed-borne inoculum may give rise to progressive

disease development in the field and reduce the commercial value of the crop.

b. Imported seed lots may introduce diseases into new regions. Tests to meet quarantine requirements may therefore be necessary.

c. Seed health testing may elucidate seedling evaluation and causes of poor germination or field establishment and thus supplement germination testing.

d. Seed health test results can/may indicate the necessity to carry out/perform seed lot treatment(s) in order to eradicate seed-borne pathogens or to reduce the risk of disease transmission.

7.2 Definitions7.2.1 Seed health

Health of seed refers primarily to the presence or absence of disease-causing organisms, such as fungi, bacteria and viruses, and animal pests, including nematodes and insects, but physiological conditions such as trace element deficiency may be involved.

7.2.2 Pretreatment

Any physical or chemical laboratory treatment of the working sample preceding incubation, given solely to facilitate testing.

7.2.3 Seed treatment

See 2.2.12. For seed health testing, a seed lot may be treated for the purpose of controlling plant pathogens or insect pests, or correcting trace element deficiencies.

7.2.4 ISTA Seed Health Method Validation Programme

Before publication in the International Rules for Seed Testing, the ISTA seed health testing methods (new or equivalent) are validated. The principles and factors which should be considered in the validation of methods for the detection of seed-borne pathogens are described in the ISTA Technical Guidelines for Organising and Analysing Results of Proficiency Tests (PT) and Interlaboratory Tests for Validation of Methods (CT).

7.3 General principlesSeed health testing should be performed using methods and equipment which have been tested to ensure they are fit for purpose. Different methods of testing are available, varying in sensitivity and reproducibility and in the amount of training and equipment required. The method used will depend on the pathogen or condition to be investigated, the species of the seed, and the purpose of the test. Selection of the method and evaluation of the results requires knowledge and experience of the methods available. The presence or absence of disease organisms, pests and deleterious physiological conditions specified by the sender is estimated as accurately as the method used permits.

7.4 Procedures7.4.1 Working sample

The entire submitted sample, or a proportion of it, depending on the test method, may be used as a working sample. The sample should be packaged and submitted in a manner which will not alter its seed health status.

Exceptionally, a submitted sample larger than that prescribed in 2.8 may be required and in such cases the sampler must be instructed accordingly.

When a portion of the submitted sample is required as a working sample, the reduction must be carried out in accordance with 2.5.2, taking appropriate precautions to avoid cross-contamination.

Normally the working sample must not be less than that specified in the method description.

Replicates containing a specified number of seeds, if required, must be taken at random from a subsample after thorough mixing.



7-2

Si se requieren repeticiones conteniendo un número especifico de semillas, éstas deben tomarse al azar de una sub-muestra luego de mezclarlas cuidadosamente.

7.4.2 Tratamiento de semillas

Los resultados del análisis pueden estar influenciados por el tratamiento aplicado al lote de semillas. Los análisis de sanidad de semillas tratadas generalmente dan resultados poco fiables debido al enmascaramiento o inhibición del crecimiento del organismo estudiado. Las Hojas de Méto-dos Individuales determinarán si es aceptable el análisis de las semillas tratadas.

7.4.3 Almacenamiento de muestras

La microflora, en el lote de semillas o en la muestra, pue-de cambiar considerablemente durante el almacenamiento en condiciones en las que la viabilidad de las semillas se mantiene satisfactoriamente. La selección de las condicio-nes apropiadas de almacenamiento debe tener en cuenta la temperatura de almacenamiento y el recipiente óptimos con el fin de mantener la integridad de la muestra.

El desarrollo abundante de hongos saprófitos en las pruebas, incluyendo “hongos de almacenamiento”, puede ser una indicación de que la semilla no es de buena cali-dad debido a las condiciones de cosecha, procesamiento o almacenamiento desfavorables o al envejecimiento. Al-gunos hongos (como Rhizopus spp.) se diseminan rápida-mente sobre los análisis hechos en blotter y pueden pudrir plántulas inicialmente sanas o interferir en el crecimiento del patógeno de las semillas infectadas. Un pretratamien-to, como se describe en el método específico, puede ser aconsejable.

7.4.4 Instrucciones específicas

Los métodos de análisis de sanidad de semillas se publican en la red, en la página de ISTA, en:

www.seedtest.org/seedhealthmethods

Los métodos de sanidad de semillas normalmente se basan en un huésped y un patógeno, pero pueden incluir métodos de múltiples patógenos. Antes de su publicación, todos los métodos de análisis de sanidad de semillas deben validarse usando el Programa de Validación de ISTA para Métodos de Sanidad de Semillas. Los métodos validados de esta manera en el momento de la publicación, se enumeran en la Tabla 7A. Las adiciones, actualizaciones y eliminacio-nes a esta lista se pueden encontrar en la página de ISTA (www.seedtest.org/seedhealthmethods). La lista definitiva es mantenida por la Secretaría ISTA. Es responsabilidad del laboratorio que usa el método, la de consultar esta lista.

7.5 Cálculo y expresión de los resultadosLos resultados se expresan cualitativamente o cuantitati-vamente como se especifica en los métodos individuales prescriptos.

7.6 Informe de los resultadosLos resultados de un análisis de sanidad de semillas se de-ben informar en “Otras determinaciones” de la siguiente manera:• los resultados cualitativos o cuantitativos, como se

especifica en los métodos individuales;• los resultados negativos y positivos, como se especifi-

ca en los métodos individuales;• el nombre científico del patógeno detectado;• el porcentaje de las semillas infectadas;• el método utilizado, incluyendo cualquier pretrata-

miento (7.2.2);• el tamaño de la muestra o fracción analizada;• cualquier método adicional permitido que se haya

usado.

La ausencia de una declaración sobre la condición sanita-ria de las semillas no implica necesariamente que la condi-ción sea satisfactoria.

7-2 Gültig ab 1. Januar 2021


2.5.2 unter Berücksichtigung entsprechender Vorsichts-maßnahmen zur Verhinderung einer Kreuz-Kontamination erfolgen.

Normalerweise darf die Untersuchungsprobe nicht kleiner sein als in der Methodenbeschreibung vorgegeben.

Wenn Wiederholungen mit einer bestimmten Anzahl von Samen gefordert werden, sind diese aus einer gut durchmischten Teilprobe zufallsgemäß zu entnehmen.

7.4.2 Saatgutbehandlung

Die Ergebnisse können durch die Behandlung der Partie beeinflusst werden. Prüfungen der Saatgutgesundheit, die bei behandeltem Saatgut angewendet werden, ergeben ge-nerell unreellere Ergebnisse aufgrund der Hemmung oder Unterdrückung des Wachstums des Ziel-Organismus. Die jeweiligen Methodenblätter geben an, ob die Prüfung von behandeltem Saatgut zu akzeptieren ist.

7.4.3 Probenlagerung

Die Mikroflora der Samen einer Partie oder einer Probe kann sich beim Lagern unter Bedingungen, bei denen die Lebensfähigkeit der Samen ausreichend gewahrt bleibt, beträchtlich ändern. Die Wahl von entsprechenden La-gerbedingungen muss die optimale Lagerungstempera-tur und Behältnisse zur Erhaltung der Probenintegrität berücksichtigen.

Eine starke Entwicklung von saprophytischen und „Lager-Pilzen“ in Untersuchungen kann anzeigen, dass infolge ungünstiger Ernte-, Aufbereitungs- oder Lagerbe-dingungen oder der Alterung die Samen nicht von guter Qualität sind. Einige Pilze (z. B. Rhizopus spp.) breiten sich schnell bei Papiertests aus und können ursprünglich gesunde Keimlinge befallen oder auf Platten den Krank-heitserreger infizierter Samen durch Überwachsen beein-trächtigen. Eine Vorbehandlung, wie sie in der spezifi-schen Methode beschrieben wird, ist zu empfehlen.

7.4.4 Besondere Richtlinien

Die speziellen Methoden zur Gesundheitsprüfung von Saatgut werden auf der ISTA-Website publiziert, unter www.seedtest.org/seedhealthmethods.

Sie basieren normalerweise auf einem Wirt und einem Krankheitserreger, jedoch können Multi-Pathogen-Metho-den eingeschlossen sein. Vor der Veröffentlichung müssen alle Methoden zur Gesundheitsprüfung von Saatgut durch das ISTA-Validierungs-Programm für Methoden zur Ge-sundheitsprüfung von Saatgut validiert worden sein. Die bis zum Drucktermin validierten Methoden sind in Tabelle 7A aufgeführt. Ergänzungen, Aktualisierungen und Strei-chungen zu dieser Liste sind auf der ISTA-Website (www.seedtest.org/seedhealthmethods) zu finden. Die verbind-liche Liste ist im ISTA-Sekretariat erhältlich. Es liegt in der Verantwortlichkeit des Labors, das die Methode nutzt, diese Liste hinzuzuziehen.

7.5 Berechnung und Wiedergabe der ErgebnisseDie Ergebnisse werden entsprechend der jeweiligen Me-thodenvorschrift entweder qualitativ oder quantitativ angegeben.

7.6 Berichterstattung der ErgebnisseDas Ergebnis einer Gesundheitsprüfung bei Saatgut muss unter „Weitere Untersuchungsergebnisse“ wie folgt be-richtet werden:• entweder qualitative oder quantitative Ergebnisse, wie

in der einzelnen Methode spezifiziert;• negative oder positive Ergebnisse, wie in der einzelnen

Methode spezifiziert;• der wissenschaftliche Namen des nachgewiesenen

Erregers;• der Prozentanteil infizierter Samen;• die verwendete Methode einschließlich jeglicher Vor-

behandlung (7.2.2);• die Größe der untersuchten Probe oder Fraktion;• jegliche zusätzliche und zulässige Behandlung, die an-

gewendet wurde.

Das Fehlen einer Angabe zum Gesundheitszustand besagt nicht zwangsläufig, dass der Gesundheitszustand zufrie-denstellend ist.

7-2 Effectives 1er janvier 2021


7.4.2 Traitement

Les résultats d’analyse peuvent être influencés par le traite-ment appliqué au lot de semences. Les analyses sanitaires des semences sur les semences traitées fourniront généra-lement des résultats d’analyse incertains provoqués par le masquage ou l’inhibition de la croissance de l’organisme cible. Les fiches de méthode détermineront si l’analyse de semences traitées est acceptable.

7.4.3 Stockage d’échantillon

La flore microbienne des semences, dans le lot ou l’échan-tillon, peut changer considérablement pendant le stockage dans les conditions où la viabilité des semences est main-tenue d’une manière satisfaisante. Le choix des conditions de stockage appropriées doit prendre en compte la tempé-rature optimale et le contenant de stockage afin de mainte-nir l’intégrité de l’échantillon.

Le développement abondant de moisissures saprophy-tiques comprenant le « champignon de stockage » dans les analyses peut être une indication que les semences ne sont pas de bonne qualité en raison des conditions défavo-rables de récolte, de procès ou de stockage, ou du vieillis-sement. Certains champignons (tel que Rhizopus spp.) se dispersent rapidement sur le buvard et peuvent entraîner la pourriture de plantules saines à l’origine ou peuvent interférer avec la croissance du pathogène à partir des semences infectées déposées sur le buvard ou le milieu. Le prétraitement comme décrit dans la méthode spécifique peut être recommandé.

7.4.4 Consignes spécifiques

Des méthodes d’analyse sanitaire spécifiques peuvent être trouvées en ligne sur le site Internet de l’ISTA à : www.seedtest.org/seedhealthmethods.

Les méthodes d’analyse sanitaire sont normalement ba-sées sur un hôte, et un pathogène, mais les méthodes pour plusieurs pathogènes peuvent être incluses. Avant publica-tion, toutes les méthodes d’analyse sanitaire des semences doivent être validées selon le Programme de Validation de Méthode d’Analyse Sanitaire des Semences de l’ISTA. Les méthodes validées ainsi au moment de l’impression sont listées dans le Tableau 7A. Des additions, des mises à jour et des suppressions à cette liste peuvent être trou-vées en ligne sur le site Internet de l’ISTA (www.seedtest.org/seedhealthmethods). La liste définitive est tenue par le secrétariat de l’ISTA. Il est de la responsabilité du labora-toire utilisant la méthode de consulter cette liste.

7.5 Calcul et expression des résultatsLes résultats sont exprimés qualitativement ou quantita-tivement comme indiqués dans les différentes méthodes prescrites.

7.6 Indication des résultatsLes résultats d’un test d’analyses sanitaires doivent être reportés sous « Autres déterminations » selon les indica-tions suivantes :• résultats qualitatifs ou quantitatifs, comme indiqué

dans les méthodes individuelles ;• résultats négatifs ou positives, comme indiqué dans les

méthodes individuelles ;• nom scientifique tu pathogène détecté ;• pourcentage de semences contaminées ;• méthode utilisée, incluant tout prétraitement (7.2.2) ;• taille d’échantillon ou de la fraction examinée ;• toute procédure additionnelle autorisée utilisée.

L’absence d’indication sur l’état sanitaire des semences n’implique pas nécessairement que l’état sanitaire est satisfaisant.


Cha

pter

7: S

eed

heal

th te

stin

gInternational Rules for Seed Testing

Effective 1 January 20217-2

7.4.2 Seed treatment

Test results may be influenced by treatment applied to the seed lot. Seed health tests on treated seeds will generally deliver unreliable test results caused by masking or inhibition of the growth of the target organism. Individual Method Sheets will determine whether the testing of treated seeds is acceptable.

7.4.3 Sample storage

The microflora of seed, in the lot or the sample, may change considerably during storage in conditions in which seed viability is satisfactorily maintained. The se-lection of the appropriate storage conditions must take into account the optimal storage temperature and con-tainer in order to maintain sample integrity.

Abundant development of saprophytic moulds including ‘storage fungi’ in tests can be an indication that the seed is not of good quality due to unfavourable harvesting, processing or storage conditions, or to ageing. Some fungi (such as Rhizopus spp.) spread rapidly over tests on blotters and may rot originally healthy seedlings or may interfere with outgrowth of the pathogen from the plated infected seeds. Pretreatment as described in the specific method may be advisable.

7.4.4 Specific directions

Specific seed health testing methods are published online on the ISTA web site at:


Seed health methods are normally based on one host, and one pathogen, but multi-pathogen methods may be

included. Before publication, all seed health test methods must be validated through the ISTA Seed Health Method Validation Programme. Methods validated in this way at the time of printing are listed in Table 7A. Additions, updates and deletions to this list can be found on the ISTA web site (www.seedtest.org/seedhealthmethods). The definitive list is held by the ISTA Secretariat. It is the responsibility of the laboratory using the method to consult this list.

7.5 Calculation and expression of resultsResults are expressed either qualitatively or quantitative-ly as specified in the individual prescribed methods.

7.6 Reporting resultsThe results of a test for seed health must be reported un-der ‘Other determinations’ as follows:• either qualitative or quantitative results, as specified

in the individual methods;• negative and positive results, as specified in the

individual methods;• the scientific name of the pathogen detected;• the percentage of infected seeds;• the method used, including any pretreatment (7.2.2);• the size of the sample or fraction examined;• any additional permitted procedure used.

The absence of a statement concerning the health condition of the seed does not necessarily imply that the health condition is satisfactory.








7-3

Tabla 7A. Métodos oficiales de ISTA para análisis de sanidad de semillas

7-001a: Detección de Alternaria dauci en semillas de Daucus carota (zanahoria ) por el método del papel secanteHuésped: Daucus carota L.Patógeno(s): Alternaria dauci (J.G.Kühn) J.J.Groves & Skolko, syn. A. porri f.sp. dauci (J.G.Kühn) Neerg., syn. A. carotae (Ellis & Langlois) Stevenson & WellmanFecha de aprobación: 2012Revisión programada: 2017

7-001b: Detección de Alternaria dauci en semillas de Daucus carota (zanahoria) por el método de agar maltaHuésped: Daucus carota L.Patógeno(s): Alternaria dauci (J.G.Kühn) J.J.Groves & Skolko, syn. A. porri f.sp. dauci (J.G.Kühn) Neerg., syn. A. carotae (Ellis & Langlois) Stevenson & WellmanFecha de aprobación: 2012Revisión programada: 2017

7-002a: Detección de Alternaria radicina en semillas de Daucus carota (zanahoria) por el método del papel secanteHuésped: Daucus carota L.Patógeno(s): Alternaria radicina Meier, Drechsler & E.D.Eddy, syn. Stemphylium radicinum (Meier, Drechsler & E.D.Eddy) NeergaardFecha de aprobación: 2012Revisión programada: 2017

7-002b: Detección de Alternaria radicina en semillas de Daucus carota (zanahoria) por el método de agar maltaHuésped: Daucus carota L.Patógeno(s): Alternaria radicina Meier, Drechsler & E.D.Eddy, syn. Stemphylium radicinum (Meier, Drechsler & E.D.Eddy) NeergaardFecha de aprobación: 2012Revisión programada: 2017

7-003: Detección de Botrytis cinerea en semillas de Helianthus annuus (girasol)Huésped: Helianthus annuus L.Patógeno(s): Botrytis cinerea Pers. ex Pers. (Estado perfecto Botryotinia fuckeliana (de Bary) Whetzel, syn. Sclerotinia fuckeliana (de Bary) Fuckel.)Fecha de aprobación: 2011Revisión programada: 2016

7-004: Detección de Leptosphaeria maculans y Plenodomus biglobosus en semillas de Brassica spp.Huésped: Brassica spp.Patógeno(s): Leptosphaeria maculans (Tode ex Fr.) Ces. & de Not (previamente Phoma lingam) o Plenodomus biglobosus (Shoemaker & H. Brun) (previamente Leptosphaeria biglobosa)Fecha de aprobación: 2017Revisión programada: 2022

7-005: Detección de Ascochyta pisi en semillas de Pisum sativum (arveja)Huésped: Pisum sativum L.s.l.Patógeno(s): Ascochyta pisi Lib.Fecha de aprobación: 2011Revisión programada: 2016

7-006: Detección de Colletotrichum lindemuthianum en semillas de Phaseolus vulgaris (frijol)Huésped: Phaseolus vulgaris L.Patógeno(s): Colletotrichum lindemuthianum (Sacc. & Magn.) Briosi & Cav.Fecha de aprobación: 2011Revisión programada: 2016

7-007: Detección de Alternaria linicola, Botrytis cinerea y Colletotrichum lini en semillas de Linum usitatissimum (lino)Huésped: Linum usitatissimum L.Patógeno(s): Alternaria linicola J.W.Groves & Skolko; Botrytis cinerea Pers. ex Pers. (Estado perfecto Botryotinia fuckeliana (de Bary) Whetzel, syn. Sclerotinia fuckeliana (de Bary) Fuckel.); Colletotrichum lini (Westerd.) Tochinai, syn. C. linicola Pethybr. & Laff.Fecha de aprobación: 2012Revisión programada: 2017

7-008: Detección de Caloscypha fulgens en semillas de Picea engelmannii y P. glauca (abeto)Huésped: Picea engelmannii Engelm.; Picea glauca (Moench) VossPatógeno(s): Caloscypha fulgens (Pers.) Boud. (Estado imperfecto Geniculodendron pyriforme Salt)Fecha de aprobación: 2011Revisión programada: 2016



7-3

7-001a: Filterpapier-Methode für den Nachweis von Alternaria dauci an Samen von Daucus carota (Möhre) Wirtspflanze: Daucus carota L.Krankheitserreger: Alternaria dauci (J.G.Kühn) J.J. Groves & Skolko, syn. A. porri f.sp. dauci (J.G.Kühn) Neerg., syn. A. carotae (Ellis & Langlois) Stevenson & WellmanFreigabetermin: 2012Termin der Überprüfung: 2017

7-001b: Malz-Agar-Methode für den Nachweis von Alternaria dauci an Samen von Daucus carota (Möhre)Wirtspflanze: Daucus carota L.Krankheitserreger: Alternaria dauci (J.G.Kühn) J.J.Groves & Skolko, syn. A. porri f.sp. dauci (J.G.Kühn) Neerg., syn. A. carotae (Ellis & Langlois) Stevenson & WellmanFreigabetermin: 2012Termin der Überprüfung: 2017

7-002a: Filterpapier-Methode für den Nachweis von Alternaria radicina an Samen von Daucus carota (Möhre)Wirtspflanze: Daucus carota L.Krankheitserreger: Alternaria radicina Meier, Drechsler & E.D.Eddy, syn. Stemphylium radicinum (Meier, Drechsler & E.D.Eddy) NeergaardFreigabetermin: 2012Termin der Überprüfung: 2017

7-002b: Malz-Agar-Methode für den Nachweis von Alternaria radicina an Samen von Daucus carota (Möhre)Wirtspflanze: Daucus carota L.Krankheitserreger: Alternaria radicina Meier, Drechsler & E.D.Eddy, syn. Stemphylium radicinum (Meier, Drechsler & E.D.Eddy) NeergaardFreigabetermin: 2012Termin der Überprüfung: 2017

7-003: Nachweis von Botrytis cinerea an Samen von Helianthus annuus (Sonnenblume)Wirtspflanze: Helianthus annuus L.Krankheitserreger: Botrytis cinerea Pers. ex Pers. (Hauptfruchtform Botryotinia fuckeliana (de Bary) Whetzel, syn. Sclerotinia fuckeliana (de Bary) Fuckel.)Freigabetermin: 2011Termin der Überprüfung: 2016

7-004: Nachweis von Leptosphaeria maculans und Plenodomus biglobosus an Brassica spp. Wirtspflanze: Brassica spp.Krankheitserreger: Leptosphaeria maculans (Tode ex Fr.) Ces. & de Not (ehemals Phoma lingam) oder Plenodomus biglobosus (Shoemaker & H. Brun) (ehemals Leptosphaeria biglobosa)Freigabetermin: 2017Termin der Überprüfung: 2022

7-005: Nachweis von Ascochyta pisi an Samen von Pisum sativum (Erbse)Wirtspflanze: Pisum sativum L.s.l.Krankheitserreger: Ascochyta pisi Lib.Freigabetermin: 2011Termin der Überprüfung: 2016

7-006: Nachweis von Colletotrichum lindemuthianum an Samen von Phaseolus vulgaris (Bohne)Wirtspflanze: Phaseolus vulgaris L.Krankheitserreger: Colletotrichum lindemuthianum (Sacc. & Magn.) Briosi & Cav.Freigabetermin: 2011Termin der Überprüfung: 2016

7-007: Nachweis von Alternaria linicola, Botrytis cinerea und Colletotrichum lini an Samen von Linum usitatissimum (Lein, Flachs)Wirtspflanze: Linum usitatissimum L.Krankheitserreger: Alternaria linicola J.W.Groves & Skolko; Botrytis cinerea Pers. ex Pers. (Hauptfruchtform Botryotinia fuckeliana (de Bary) Whetzel, syn. Sclerotinia fuckeliana (de Bary) Fuckel.); Colletotrichum lini (Westerd.) Tochinai, syn. C. linicola Pethybr. & Laff.Freigabetermin: 2012Termin der Überprüfung: 2017

7-008: Nachweis von Caloscypha fulgens an Samen von Picea engelmannii und P. glauca (Fichte) Wirtspflanze: Picea engelmannii Engelm.; Picea glauca (Moench) VossKrankheitserreger: Caloscypha fulgens (Pers.) Boud. (Nebenfruchtform Geniculodendron pyriforme Salt)Freigabetermin: 2011Termin der Überprüfung: 2016

Tabelle 7A. Offizielle ISTA-Methoden zur Gesundheitsprüfung vom Saatgut



7-3

7-001a : Méthode sur buvard pour la détection d’Alternaria dauci sur semences de Daucus carota (carotte) Hôte : Daucus carota L.Pathogène(s) : Alternaria dauci (J.G.Kühn) J.J.Groves & Skolko, syn. A. porri f.sp. dauci (J.G.Kühn) Neerg., syn. A. carotae (Ellis & Langlois) Stevenson & WellmanDate d'approbation : 2012Date de révision : 2017

7-001b : Méthode sur malt agar pour la détection d’Alternaria dauci sur semences de Daucus carota (carotte)Hôte : Daucus carota L.Pathogène(s) : Alternaria dauci (J.G.Kühn) J.J.Groves & Skolko, syn. A. porri f.sp. dauci (J.G.Kühn) Neerg., syn. A. carotae (Ellis & Langlois) Stevenson & WellmanDate d'approbation : 2012Date de révision : 2017

7-002a : Méthode sur buvard pour la détection d’Alternaria radicina sur semences de Daucus carota (carotte) Hôte : Daucus carota L.Pathogène(s) : Alternaria radicina Meier, Drechsler & E.D.Eddy, syn. Stemphylium radicinum (Meier, Drechsler & E.D.Eddy) NeergaardDate d'approbation : 2012Date de révision : 2017

7-002b : Méthode sur malt agar pour la détection d’Alternaria radicina sur semences de Daucus carota (carotte)Hôte : Daucus carota L.Pathogène(s) : Alternaria radicina Meier, Drechsler & E.D.Eddy, syn. Stemphylium radicinum (Meier, Drechsler & E.D.Eddy) NeergaardDate d'approbation : 2012Date de révision : 2017

7-003 : Détection de Botrytis cinerea sur semences de Helianthus annuus (tournesol)Hôte : Helianthus annuus L.Pathogène(s) : Botrytis cinerea Pers. ex Pers. (Stade parfait Botryotinia fuckeliana (de Bary) Whetzel, syn. Sclerotinia fuckeliana (de Bary) Fuckel.)Date d'approbation : 2011Date de révision : 2016

7-004 : Détection de Leptosphaeria maculans et Plenodomus biglobosus sur semences de Brassica spp. Hôte : Brassica spp.Pathogène(s) : Leptosphaeria maculans (Tode ex Fr.) Ces. & de Not (précédemment Phoma lingam) ou Plenodomus biglobosus (Shoemaker & H. Brun) (précédemment Leptosphaeria biglobosa)Date d'approbation : 2017Date de révision : 2022

7-005 : Détection d’Ascochyta pisi sur semences de Pisum sativum (pois)Hôte : Pisum sativum L.s.l.Pathogène(s) : Ascochyta pisi Lib.Date d'approbation : 2011Date de révision : 2016

7-006 : Détection de Colletotrichum lindemuthianum sur semences de Phaseolus vulgaris (haricot)Hôte : Phaseolus vulgaris L.Pathogène(s) : Colletotrichum lindemuthianum (Sacc. & Magn.) Briosi & Cav.Date d'approbation : 2011Date de révision : 2016

7-007 : Détection de Alternaria linicola, Botrytis cinerea et Colletotrichum lini sur semences de Linum usitatissimum (lin)Hôte : Linum usitatissimum L.Pathogène(s) : Alternaria linicola J.W.Groves & Skolko; Botrytis cinerea Pers. ex Pers. (Stade parfait Botryotinia fuckeliana (de Bary) Whetzel, syn. Sclerotinia fuckeliana (de Bary) Fuckel.); Colletotrichum lini (Westerd.) Tochinai, syn. C. linicola Pethybr. & Laff.Date d'approbation : 2012Date de révision : 2017

7-008 : Détection de Caloscypha fulgens sur semences de Picea engelmannii et P. glauca (sapin)Hôte : Picea engelmannii Engelm.; Picea glauca (Moench) VossPathogène(s) : Caloscypha fulgens (Pers.) Boud. (Stade imparfait Geniculodendron pyriforme Salt)Date d'approbation : 2011Date de révision : 2016

Tableau 7A. Méthodes officielles d’analyse sanitaire de semences de l’ISTA

7-3


Cha

pter

7: S

eed

heal

th te

stin

g



7-001a: Detection of Alternaria dauci in Daucus carota (carrot) seed by blotter methodHost: Daucus carota L.Pathogen(s): Alternaria dauci (J.G.Kühn) J.J.Groves & Skolko, syn. A. porri f.sp. dauci (J.G.Kühn) Neerg., syn. A. carotae (Ellis & Langlois) Stevenson & WellmanDate approved: 2012Review due: 2017

7-001b: Detection of Alternaria dauci in Daucus carota (carrot) seed by malt agar methodHost: Daucus carota L.Pathogen(s): Alternaria dauci (J.G.Kühn) J.J.Groves & Skolko, syn. A. porri f.sp. dauci (J.G.Kühn) Neerg., syn. A. carotae (Ellis & Langlois) Stevenson & WellmanDate approved: 2012Review due: 2017

7-002a: Detection of Alternaria radicina in Daucus carota (carrot) seed by blotter methodHost: Daucus carota L.Pathogen(s): Alternaria radicina Meier, Drechsler & E.D.Eddy, syn. Stemphylium radicinum (Meier, Drechsler & E.D.Eddy) NeergaardDate approved: 2012Review due: 2017

7-002b: Detection of Alternaria radicina in Daucus carota (carrot) seed by malt agar methodHost: Daucus carota L.Pathogen(s): Alternaria radicina Meier, Drechsler & E.D.Eddy, syn. Stemphylium radicinum (Meier, Drechsler & E.D.Eddy) NeergaardDate approved: 2012Review due: 2017

7-003: Detection of Botrytis cinerea in Helianthus annuus (sunflower) seedHost: Helianthus annuus L.Pathogen(s): Botrytis cinerea Pers. ex Pers. (Perfect state Botryotinia fuckeliana (de Bary) Whetzel, syn. Sclerotinia fuckeliana (de Bary) Fuckel.)Date approved: 2011Review due: 2016

7-004: Detection of Leptosphaeria maculans and Plenodomus biglobosus in Brassica spp. seedHost: Brassica spp.Pathogen(s): Leptosphaeria maculans (Tode ex Fr.) Ces. & de Not (previously Phoma lingam) or Plenodomus biglobosus (Shoemaker & H. Brun) (previously Leptosphaeria biglobosa)Date approved: 2017Review due: 2022

7-005: Detection of Ascochyta pisi in Pisum sativum (pea) seedHost: Pisum sativum L.s.l.Pathogen(s): Ascochyta pisi Lib.Date approved: 2011Review due: 2016

7-006: Detection of Colletotrichum lindemuthianum in Phaseolus vulgaris (bean) seedHost: Phaseolus vulgaris L.Pathogen(s): Colletotrichum lindemuthianum (Sacc. & Magn.) Briosi & Cav.Date approved: 2011Review due: 2016

7-007: Detection of Alternaria linicola, Botrytis cinerea and Colletotrichum lini in Linum usitatissimum (flax, linseed) seedHost: Linum usitatissimum L.Pathogen(s): Alternaria linicola J.W.Groves & Skolko; Botrytis cinerea Pers. ex Pers. (Perfect state Botryotinia fuckeliana (de Bary) Whetzel, syn. Sclerotinia fuckeliana (de Bary) Fuckel.); Colletotrichum lini (Westerd.) Tochinai, syn. C. linicola Pethybr. & Laff.Date approved: 2012Review due: 2017

7-008: Detection of Caloscypha fulgens in Picea engelmannii and P. glauca (spruce) seedHost: Picea engelmannii Engelm.; Picea glauca (Moench) VossPathogen(s): Caloscypha fulgens (Pers.) Boud. (Imperfect state Geniculodendron pyriforme Salt)Date approved: 2011Review due: 2016

Table 7A. ISTA official seed health testing methods



7-4

7-009: Detección de Fusarium circinatum en semillas de Pinus spp. (pino) y Pseudotsuga menziesii (abeto de Douglas)Huésped: Pinus spp.; Pseudotsuga menziesii (Mirb.) FrancoPatógeno(s): Fusarium circinatum Nirenberg & O’Don-nell (syn. Fusarium subglutinans f. sp. pini Hepting, syn. Fusarium lateritium f. sp. pini Hepting, syn. Gibberella circinata)Fecha de aprobación: 2018Revisión programada: 2023

7-010: Detección de Bipolaris oryzae en semillas de Oryza sativa (arroz)Huésped: Oryza sativa L.Patógeno(s): Bipolaris oryzae (Breda de Haan) Shoem., syn. Drechslera oryzae, syn. Helminthosporium oryzae Breda de Haan (Estado perfecto Cochliobolus miyabeanus (Ito & Kurib.) Drechsler ex Dastur, syn. Ophiobolus miyabeanus Ito & Kuribayashi)Fecha de aprobación: 2018Revisión programada: 2023

7-011: Detección de Pyricularia oryzae en semillas de Oryza sativa (arroz)Huésped: Oryza sativa L.Patógeno(s): Magnaporthe grisea (Hebert) Barr (Estado imperfecto Pyricularia oryzae Cavara, syn. P. grisea)Fecha de aprobación: 2011Revisión programada: 2016

7-012: Detección de Trichoconiella padwickii en semillas de Oryza sativa (arroz)Huésped: Oryza sativa L.Patógeno(s): Trichoconiella padwickii Ganguly, syn. Alternaria padwickii (Ganguly) JainFecha de aprobación: 2018Revisión programada: 2023

7-013a: Detección de Ustilago nuda por extracción embrionaria en semillas de Hordeum vulgare subsp. vulgare (cebada)Huésped: Hordeum vulgare L. subsp. vulgarePatógeno(s): Ustilago nuda (Jens.) Rostr.Fecha de aprobación: 2011Revisión programada: 2016

7-013b: Detección de Ustilago nuda en semillas de Hordeum vulgare subsp. vulgare (cebada) por el descascarado y extracción embrionariaHuésped: Hordeum vulgare L. subsp. vulgarePatógeno(s): Ustilago nuda (Jens.) Rostr.Fecha de aprobación: 2011Revisión programada: 2016

7-014: Detección de Parastagonospora nodorum en semillas de Triticum aestivum subsp. aestivum (trigo)Huésped: Triticum aestivum L. subsp. aestivumPatógeno(s): Parastagonospora nodorum (Berk.) Quaedvl., Verkley & Crous 2013, syn. Stagonospora nodorum, syn. Sep toria nodorum Berk. (Estado perfecto Leptosphaeria nodorum Mailer)Fecha de aprobación: 2018Revisión programada: 2023

7-015: Detección de Epichloë coenophiala en semillas de Festuca spp. (festuca) y de Neotyphodium lolii en semillas de Lolium spp. (ryegrass)Huésped: Festuca spp., Lolium spp.Patógeno(s): Epichloë coenophiala (Morgan-Jones & W. Gams) C.W. Bacon & Schardl; Neotyphodium lolii (Latch, M.J.Chr. & Samuels) Glenn, C.W.Bacon & HanlinFecha de aprobación: 2017Revisión programada: 2022

7-016: Detección del complejo Phomopsis en semillas de Glycine max (soja, poroto soja)Huésped: Glycine max (L.) Merr.Patógeno(s): Phomopsis longicolla Hobbs, Diaporthe phaseolorum var. sojae (Lehm.) Wehm. (Estado imperfecto P. phaseoli (Desm.) Sacc., syn. P. sojae Lehmann); Diaporthe phaseolorum (Cke. & Ell.) Sacc. f. sp. caulivora (DPC), syn. D. phaseolorum var. caulivora Athow & CaldwellFecha de aprobación: 2012Revisión programada: 2017

7-017: (Reemplazado por 7-007)

7-018: (Reemplazado por 7-007)

7-019a: Detección de Xanthomonas campestris pv. campestris y Xanthomonas campestris pv. raphani en semillas de Brassica spp. Huésped: Brassica spp.Patógeno(s): Xanthomonas campestris pv. campestris (Pammel) Dowson y Xanthomonas campestris pv. raphaniFecha de aprobación: 2019Revisión programada: 2024

7-019b: Detección de Xanthomonas campestris pv. campestris en semillas desinfestada/desinfectada de Brassica spp.Huésped: Brassica spp.Patógeno(s): Xanthomonas campestris pv. campestris (Pammel) DowsonFecha de aprobación: 2018Revisión programada: 2023

Table 7A. Métodos oficiales de ISTA para análisis de sanidad de semillas (continuación)



7-009: Nachweis von Fusarium circinatum an Samen von Pinus spp. (Kiefer) und Pseudotsuga menziesii (Douglasie) Wirtspflanze: Pinus spp.; Pseudotsuga menziesii (Mirb.) FrancoKrankheitserreger: Fusarium circinatum Nirenberg & O’Don nell (syn. Fusarium subglutinans f. sp. pini Hepting, syn. Fusarium lateritium f. sp. pini Hepting, syn. Gibberella circinata)Freigabetermin: 2018Termin der Überprüfung: 2023

7-010: Nachweis von Bipolaris oryzae an Samen von Oryza sativa (Reis) Wirtspflanze: Oryza sativa L.Krankheitserreger: Bipolaris oryzae (Breda de Haan) Shoem., syn. Drechslera oryzae, syn. Helminthosporium oryzae Breda de Haan (Hauptfruchtform Cochliobolus miyabeanus (Ito & Kurib.) Drechsler ex Dastur, syn. Ophiobolus miyabeanus Ito & Kuribayashi)Freigabetermin: 2018Termin der Überprüfung: 2023

7-011: Nachweis von Pyricularia oryzae an Samen von Oryza sativa (Reis) Wirtspflanze: Oryza sativa L.Krankheitserreger: Magnaporthe grisea (Hebert) Barr (Nebenfruchtform Pyricularia oryzae Cavara, syn. P. grisea)Freigabetermin: 2011Termin der Überprüfung: 2016

7-012: Nachweis von Trichoconiella padwickii an Samen von Oryza sativa (Reis) Wirtspflanze: Oryza sativa L.Krankheitserreger: Trichoconiella padwickii Ganguly, syn. Alternaria padwickii (Ganguly) JainFreigabetermin: 2018Termin der Überprüfung: 2023

7-013a: Nachweis von Ustilago nuda an Samen von Hordeum vulgare subsp. vulgare (Gerste) durch Embryo-Extraktion Wirtspflanze: Hordeum vulgare L. subsp. vulgareKrankheitserreger: Ustilago nuda (Jens.) Rostr.Freigabetermin: 2011Termin der Überprüfung: 2016

7-013b: Nachweis von Ustilago nuda an Samen von Hordeum vulgare subsp. vulgare (Gerste) durch Entspelzung und „floating embryo extraction“Wirtspflanze: Hordeum vulgare L. subsp. vulgareKrankheitserreger: Ustilago nuda (Jens.) Rostr.Freigabetermin: 2011Termin der Überprüfung: 2016

7-014: Nachweis von Parastagonospora nodorum an Samen von Triticum aestivum subsp. aestivum (Weizen) Wirtspflanze: Triticum aestivum L. subsp. aestivumKrankheitserreger: Parastagonospora nodorum (Berk.) Quaedvl., Verkley & Crous 2013, syn. Stagonospora nodorum, syn. Sep toria nodorum Berk. (Hauptfruchtform Leptosphaeria nodorum Mailer)Freigabetermin: 2018Termin der Überprüfung: 2023

7-015: Nachweis von Epichloë coenophiala an Festuca spp. (Schwingel) und Neotyphodium lolii an Lolium spp. (Lolch, Weidelgras) Wirtspflanze: Festuca spp., Lolium spp.Krankheitserreger: Epichloë coenophiala (Morgan-Jones & W. Gams) C.W. Bacon & Schardl; Neotyphodium lolii (Latch, M.J.Chr. & Samuels) Glenn, C.W.Bacon & HanlinFreigabetermin: 2017Termin der Überprüfung: 2022

7-016: Nachweis von Phomopsis-Komplex an Samen von Glycine max (Sojabohne)Wirtspflanze: Glycine max (L.) Merr.Krankheitserreger: Phomopsis longicolla Hobbs, Diaporthe phaseolorum var. sojae (Lehm.) Wehm. (Ne-benfruchtform P. phaseoli (Desm.) Sacc., syn. P. sojae Lehmann); Diaporthe phaseolorum (Cke. & Ell.) Sacc. f. sp. caulivora (DPC), syn. D. phaseolorum var. caulivora Athow & CaldwellFreigabetermin: 2012Termin der Überprüfung: 2017

7-017: (Ersetzt durch 7-007)

7-018: (Ersetzt durch 7-007)

7-019a: Nachweis von Xanthomonas campestris pv. campestris und Xanthomonas campestris pv. raphani an Samen von Brassica spp. Wirtspflanze: Brassica spp.Krankheitserreger: Xanthomonas campestris pv. campestris (Pammel) Dowson und Xanthomonas campestris pv. raphaniFreigabetermin: 2019Termin der Überprüfung: 2024

7-019b: Nachweis von Xanthomonas campestris pv. campestris an desinfizierten/hygienisierten Samen von Brassica spp. Wirtspflanze: Brassica spp.Krankheitserreger: Xanthomonas campestris pv. campestris (Pammel) DowsonFreigabetermin: 2018Termin der Überprüfung: 2023

Tabelle 7A. Offizielle ISTA-Methoden zur Gesundheitsprüfung vom Saatgut (Fortsetzung)



Table 7A. Méthodes officielles d’analyse sanitaire de semences de l’ISTA (suite)

7-009 : Détection de Fusarium circinatum sur semences de Pinus spp. (pin) et Pseudotsuga menziesii (pin de Douglas)Hôte : Pinus spp.; Pseudotsuga menziesii (Mirb.) FrancoPathogène(s) : Fusarium circinatum Nirenberg & O’Don-nell (syn. Fusarium subglutinans f. sp. pini Hepting, syn. Fusarium lateritium f. sp. pini Hepting, syn. Gibberella circinata)Date d'approbation : 2018Date de révision : 2023

7-010 : Détection de Bipolaris oryzae sur semences de Oryza sativa (riz)Hôte : Oryza sativa L.Pathogène(s) : Bipolaris oryzae (Breda de Haan) Shoem., syn. Drechslera oryzae, syn. Helminthosporium oryzae Breda de Haan (Stade parfait Cochliobolus miyabeanus (Ito & Kurib.) Drechsler ex Dastur, syn. Ophiobolus miyabeanus Ito & Kuribayashi)Date d'approbation : 2018Date de révision : 2023

7-011 : Détection de Pyricularia oryzae sur semences de Oryza sativa (riz)Hôte : Oryza sativa L.Pathogène(s) : Magnaporthe grisea (Hebert) Barr (Stade imparfait Pyricularia oryzae Cavara, syn. P. grisea)Date d'approbation : 2011Date de révision : 2016

7-012 : Détection de Trichoconiella padwickii sur semences de Oryza sativa (riz)Hôte : Oryza sativa L.Pathogène(s) : Trichoconiella padwickii Ganguly, syn. Alternaria padwickii (Ganguly) JainDate d'approbation : 2018Date de révision : 2023

7-013a : Détection d’Ustilago nuda sur semences de Hordeum vulgare subsp. vulgare (orge) par méthode d’extraction d’embryonsHôte : Hordeum vulgare L. subsp. vulgarePathogène(s) : Ustilago nuda (Jens.) Rostr.Date d'approbation : 2011Date de révision : 2016

7-013b : Détection d’Ustilago nuda sur semences de Hordeum vulgare subsp. vulgare (orge) par méthode d’extraction par décorticage et flottaison d’embryonsHôte : Hordeum vulgare L. subsp. vulgarePathogène(s) : Ustilago nuda (Jens.) Rostr.Date d'approbation : 2011Date de révision : 2016

7-014 : Détection de Parastagonospora nodorum sur semences de Triticum aestivum subsp. aestivum (blé)Hôte : Triticum aestivum L. subsp. aestivumPathogène(s) : Parastagonospora nodorum (Berk.) Quaedvl., Verkley & Crous 2013, syn. Stagonospora nodorum, syn. Sep toria nodorum Berk. (Stade parfait Leptosphaeria nodorum Mailer)Date d'approbation : 2018Date de révision : 2023

7-015 : Détection d’Epichloë coenophiala sur Festuca spp. (fétuque) et de Neotyphodium lolii sur Lolium spp. (ray-grass)Hôte : Festuca spp., Lolium spp.Pathogène(s) : Epichloë coenophiala (Morgan-Jones & W. Gams) C.W. Bacon & Schardl ; Neotyphodium lolii (Latch, M.J.Chr. & Samuels) Glenn, C.W. Bacon & HanlinDate d'approbation : 2017Date de révision : 2022

7-016 : Detection de complexe de Phomopsis sur semences de Glycine max (soja)Hôte : Glycine max (L.) Merr.Pathogène(s) : Phomopsis longicolla Hobbs, Diaporthe phaseolorum var. sojae (Lehm.) Wehm. (Stade imparfait P. phaseoli (Desm.) Sacc., syn. P. sojae Lehmann); Diaporthe phaseolorum (Cke. & Ell.) Sacc. f. sp. caulivora (DPC), syn. D. phaseolorum var. caulivora Athow & CaldwellDate d'approbation : 2012Date de révision : 2017

7-017 : (Remplacée par 7-007)

7-018 : (Remplacée par 7-007)

7-019a : Détection de Xanthomonas campestris pv. campestris et Xanthomonas campestris pv. raphani sur semences de Brassica spp.Hôte : Brassica spp.Pathogène(s) : Xanthomonas campestris pv. campestris (Pammel) Dowson et Xanthomonas campestris pv. raphaniDate d'approbation : 2019Date de révision : 2024

7-019b : Détection de Xanthomonas campestris pv. campestris sur semences de Brassica spp. désinfectéesHôte : Brassica spp.Pathogène(s) : Xanthomonas campestris pv. campestris (Pammel) DowsonDate d'approbation : 2018Date de révision : 2023


Cha

pter

7: S

eed

heal

th te

stin



7-009: Detection of Fusarium circinatum 1n Pinus spp. (pine) and Pseudotsuga menziesii (Douglas fir) seedHost: Pinus spp.; Pseudotsuga menziesii (Mirb.) FrancoPathogen(s): Fusarium circinatum Nirenberg & O’Don-nell (syn. Fusarium subglutinans f. sp. pini Hepting, syn. Fusarium lateritium f. sp. pini Hepting, syn. Gibberella circinata)Date approved: 2018Review due: 2023

7-010: Detection of Bipolaris oryzae in Oryza sativa (rice) seedHost: Oryza sativa L.Pathogen(s): Bipolaris oryzae (Breda de Haan) Shoem., syn. Drechslera oryzae, syn. Helminthosporium oryzae Breda de Haan (Perfect state Cochliobolus miyabeanus (Ito & Kurib.) Drechsler ex Dastur, syn. Ophiobolus miyabeanus Ito & Kuribayashi)Date approved: 2018Review due: 2023

7-011: Detection of Pyricularia oryzae in Oryza sativa (rice) seedHost: Oryza sativa L.Pathogen(s): Magnaporthe grisea (Hebert) Barr (Imperfect state Pyricularia oryzae Cavara, syn. P. grisea)Date approved: 2011Review due: 2016

7-012: Detection of Trichoconiella padwickii in Oryza sativa (rice) seedHost: Oryza sativa L.Pathogen(s): Trichoconiella padwickii Ganguly, syn. Alternaria padwickii (Ganguly) JainDate approved: 2018Review due: 2023

7-013a: Detection of Ustilago nuda in Hordeum vulgare subsp. vulgare (barley) seed by embryo extractionHost: Hordeum vulgare L. subsp. vulgarePathogen(s): Ustilago nuda (Jens.) Rostr.Date approved: 2011Review due: 2016

7-013b: Detection of Ustilago nuda in Hordeum vulgare subsp. vulgare (barley) seed by dehulling and embryo extractionHost: Hordeum vulgare L. subsp. vulgarePathogen(s): Ustilago nuda (Jens.) Rostr.Date approved: 2011Review due: 2016

7-014: Detection of Parastagonospora nodorum in Triticum aestivum subsp. aestivum (wheat) seedHost: Triticum aestivum L. subsp. aestivum Pathogen(s): Parastagonospora nodorum (Berk.) Quaedvl., Verkley & Crous 2013, syn. Stagonospora nodorum, syn. Sep toria nodorum Berk. (Perfect state Leptosphaeria nodorum Mailer)Date approved: 2018Review due: 2023

7-015: Detection of Epichloë coenophiala in Festuca spp. (fescue) and of Neotyphodium lolii in Lolium spp. (ryegrass) seedHost: Festuca spp., Lolium spp.Pathogen(s): Epichloë coenophiala (Morgan-Jones & W. Gams) C.W. Bacon & Schardl; Neotyphodium lolii (Latch, M.J.Chr. & Samuels) Glenn, C.W.Bacon & HanlinDate approved: 2017Review due: 2022

7-016: Detection of Phomopsis complex in Glycine max (soybean, soya bean) seedHost: Glycine max (L.) Merr.Pathogen(s): Phomopsis longicolla Hobbs, Diaporthe phaseolorum var. sojae (Lehm.) Wehm. (Imperfect state P. phaseoli (Desm.) Sacc., syn. P. sojae Lehmann); Diaporthe phaseolorum (Cke. & Ell.) Sacc. f. sp. caulivora (DPC), syn. D. phaseolorum var. caulivora Athow & CaldwellDate approved: 2012Review due: 2017

7-017: (Replaced by 7-007)

7-018: (Replaced by 7-007)

7-019a: Detection of Xanthomonas campestris pv. campestris and Xanthomonas campestris pv. raphani in Brassica spp. seedHost: Brassica spp.Pathogen(s): Xanthomonas campestris pv. campestris (Pammel) Dowson and Xanthomonas campestris pv. raphaniDate approved: 2019Review due: 2024

7-019b: Detection of Xanthomonas campestris pv. campestris in disinfested/disinfected Brassica spp. seed Host: Brassica spp.Pathogen(s): Xanthomonas campestris pv. campestris (Pammel) DowsonDate approved: 2018Review due: 2023

Table 7A. ISTA official seed health testing methods (cont.)



7-5

7-020: Detección de Xanthomonas hortorum pv. carotae en semillas de Daucus carota (zanahoria)Huésped: Daucus carota L.Patógeno(s): Xanthomonas hortorum pv. carotae (Kendrick) Vauterin, Hoste, Kersters & Swings, syn. X. campestris pv. carotae (Kend) Dye Fecha de aprobación: 2010Revisión programada: 2015

7-021: Detección de Xanthomonas axonopodis pv. phaseoli y X. axonopodis pv. phaseoli var. fuscans en semillas de Phaseolus vulgaris (frijol)Huésped: Phaseolus vulgaris L.Patógeno(s): Xanthomonas axonopodis pv. phaseoli (Smith) Vauterin, Hoste, Kersters & Swings, syn. X. campestris pv. phaseoli (Smith) Dye; Xanthomonas axonopodis pv. phaseoli var. fuscans Vauterin, Hoste, Kersters & Swings, syn. X. campestris pv. phaseoli var. fuscans (Burkholder) Starr & BurkholderFecha de aprobación: 2011Revisión programada: 2016

7-022: Detección de Microdochium nivale y M. majus en semillas de Triticum spp. (trigo)Huésped: Triticum spp.Patógeno(s): Microdochium nivale Samuels & Hallett, syn. Fusarium nivale (Fr.) Rabenh. (Estado perfecto Monographella nivalis (Schaff.) Müller); M. majus (Wollenw.) Glynn & S.G.Edwards, syn. M. nivale var. majus (Wollenw.) Samuels & I.C.HallettFecha de aprobación: 2018Revisión programada: 2023

7-023: Detección de Pseudomonas savastanoi pv. phaseolicola en semillas de Phaseolus vulgaris (frijol)Huésped: Phaseolus vulgaris L.Patógeno(s): Pseudomonas savastanoi pv. phaseolicola (Burkh.) Gardan, Bollet, Abu, Ghorrah, Grimont & Grimont, syn. P. syringae pv. phaseolicola (Burkh.) Young, Dye & WilkieFecha de aprobación: 2012Revisión programada: 2017

7-024: Detección de virus del pardeamiento temprano de arveja y virus del mosaico de arveja en semillas de Pisum sativum (arveja)Huésped: Pisum sativum L.s.l.Patógeno(s): Pea early browning virus (PEBV) y pea seed-borne mosaic virus (PSbMV)Fecha de aprobación: 2012Revisión programada: 2017

7-025: Detección de Aphelenchoides besseyi en semillas de Oryza sativa (arroz)Huésped: Oryza sativa L.Patógeno(s): Aphelenchoides besseyi ChristieFecha de aprobación: 2019Revisión programada: 2024

7-026: Detección del virus del mosaico de calabaza, virus del mosaico del moteado verde del pepino y virus de la mancha necrótica del melón en semillas de cucurbitáceasHuésped: CucurbitáceasPatógeno(s): Squash mosaic virus (SqMV); cucumber green mottle mosaic virus (CGMMV); melon necrotic spot virus (MNSV)Fecha de aprobación: 2014Revisión programada: 2019

7-027: Detección de Pyrenophora teres y P. graminea en semillas de Hordeum vulgare subsp. vulgare (cebada)Huésped: Hordeum vulgare L. subsp. vulgarePatógeno(s): Pyrenophora teres Drechsler (Estado imperfecto Drechslera teres (Sacc.) Shoem.); Pyrenophora graminea Ito & Kurib. (Estado imperfecto D. graminea (Rabenh. Ex Schlecht.) Shoem.)Fecha de aprobación: 2011Revisión programada: 2016

7-028: Detección del virus del mosaico del tabaco infeccioso y del virus del mosaico del tomate en semillas de Solanum lycopersicum (tomate) por ensayo de lesiones locales (indexaje) en plantas de Nicotiana tabacumHuésped: Solanum lycopersicum L.Patógeno(s): Tobacco mosaic virus (TMV); tomato mosaic virus (ToMV)Fecha de aprobación: 2012Revisión programada: 2017

7-029: Detección de Pseudomonas syringae pv. pisi en semillas de Pisum sativum (arveja)Huésped: Pisum sativum L.s.l.Patógeno(s): Pseudomonas syringae pv. pisi (Sack.) Young, Dye & WilkieFecha de aprobación: 2012Revisión programada: 2017

7-030: Detección de Acidovorax valerianellae en semillas de Valerianella locusta (canónigo)Huésped: Valerianella locusta (L.) Laterr.Patógeno(s): Acidovorax valerianellae sp. nov. Fecha de aprobación: 2014Revisión programada: 2019




7-5

7-020: Nachweis von Xanthomonas hortorum pv. carotae an Samen von Daucus carota (Möhre) Wirtspflanze: Daucus carota L.Krankheitserreger: Xanthomonas hortorum pv. carotae (Kendrick) Vauterin, Hoste, Kersters & Swings, syn. X. campestris pv. carotae (Kend) Dye Freigabetermin: 2010Termin der Überprüfung: 2015

7-021: Nachweis von Xanthomonas axonopodis pv. phaseoli und X. axonopodis pv. phaseoli var. fuscans an Samen von Phaseolus vulgaris (Bohne) Wirtspflanze: Phaseolus vulgaris L.Krankheitserreger: Xanthomonas axonopodis pv. phaseoli (Smith) Vauterin, Hoste, Kersters & Swings, syn. X. campestris pv. phaseoli (Smith) Dye; Xanthomonas axonopodis pv. phaseoli var. fuscans Vauterin, Hoste, Kersters & Swings, syn. X. campestris pv. phaseoli var. fuscans (Burkholder) Starr & BurkholderFreigabetermin: 2011Termin der Überprüfung: 2016

7-022: Nachweis von Microdochium nivale und M. majus an Samen von Triticum spp. (Weizen) Wirtspflanze: Triticum spp.Krankheitserreger: Microdochium nivale Samuels & Hallett, syn. Fusarium nivale (Fr.) Rabenh. (Hauptfruchtform Monographella nivalis (Schaff.) Müller); M. majus (Wollenw.) Glynn & S.G.Edwards, syn. M. nivale var. majus (Wollenw.) Samuels & I.C.HallettFreigabetermin: 2018Termin der Überprüfung: 2023

7-023: Nachweis von Pseudomonas savastanoi pv. phaseolicola an Samen von Phaseolus vulgaris (Bohne) Wirtspflanze: Phaseolus vulgaris L.Krankheitserreger: Pseudomonas savastanoi pv. phaseolicola (Burkh.) Gardan, Bollet, Abu, Ghorrah, Grimont & Grimont, syn. P. syringae pv. phaseolicola (Burkh.) Young, Dye & WilkieFreigabetermin: 2012Termin der Überprüfung: 2017

7-024: Nachweis von pea early browning virus und pea seed-borne mosaic virus an Samen von Pisum sativum (Erbse) Wirtspflanze: Pisum sativum L.s.l.Krankheitserreger: Pea early browning virus (PEBV); pea seed-borne mosaic virus (PSbMV)Freigabetermin: 2012Termin der Überprüfung: 2017

7-025: Nachweis von Aphelenchoides besseyi an Samen von Oryza sativa (Reis) Wirtspflanze: Oryza sativa L.Krankheitserreger: Aphelenchoides besseyi ChristieFreigabetermin: 2019Termin der Überprüfung: 2024

7-026: Nachweis von squash mosaic virus, cucumber green mottle mosaic virus und melon necrotic spot virus an Samen von Kürbisgewächsen Wirtspflanze: CucurbitsKrankheitserreger: Squash mosaic virus (SqMV); cucumber green mottle mosaic virus (CGMMV); melon necrotic spot virus (MNSV)Freigabetermin: 2014Termin der Überprüfung: 2019

7-027: Nachweis von Pyrenophora teres und P. graminea an Samen von Hordeum vulgare subsp. vulgare (Gerste) Wirtspflanze: Hordeum vulgare L. subsp. vulgareKrankheitserreger: Pyrenophora teres Drechsler (Imperfekte Form Drechslera teres (Sacc.) Shoem.); Pyrenophora graminea Ito & Kurib. (Imperfekte Form D. graminea (Rabenh. Ex Schlecht.) Shoem.)Freigabetermin: 2011Termin der Überprüfung: 2016

7-028: Nachweis von infektiöser tobacco mosaic virus und tomato mosaic virus an Samen von Solanum lycopersicum (Tomate) durch den Lokalläsionentest (Indexierung) an Pflanzen von Nicotiana tabacumWirtspflanze: Solanum lycopersicum L.Krankheitserreger: Tobacco mosaic virus (TMV); tomato mosaic virus (ToMV)Freigabetermin: 2012Termin der Überprüfung: 2017

7-029: Nachweis von Pseudomonas syringae pv. pisi an Samen von Pisum sativum (Erbse) Wirtspflanze: Pisum sativum L.s.l.Krankheitserreger: Pseudomonas syringae pv. pisi (Sack.) Young, Dye & WilkieFreigabetermin: 2012Termin der Überprüfung: 2017

7-030: Nachweis von Acidovorax valerianellae an Samen von Valerianella locusta (Feldsalat) Wirtspflanze: Valerianella locusta (L.) Laterr.Krankheitserreger: Acidovorax valerianellae sp. nov. Freigabetermin: 2014Termin der Überprüfung: 2019




7-5


7-020 : Détection de Xanthomonas hortorum pv. carotae sur semences de Daucus carota (carotte)Hôte : Daucus carota L.Pathogène(s) : Xanthomonas hortorum pv. carotae (Kendrick) Vauterin, Hoste, Kersters & Swings, syn. X. campestris pv. carotae (Kend) Dye Date d'approbation : 2010Date de révision : 2015

7-021 : Detection de Xanthomonas axonopodis pv. phaseoli et X. axonopodis pv. phaseoli var. fuscans sur semences de Phaseolus vulgaris (haricot) Hôte : Phaseolus vulgaris L.Pathogène(s) : Xanthomonas axonopodis pv. phaseoli (Smith) Vauterin, Hoste, Kersters & Swings, syn. X. campestris pv. phaseoli (Smith) Dye; Xanthomonas axonopodis pv. phaseoli var. fuscans Vauterin, Hoste, Kersters & Swings, syn. X. campestris pv. phaseoli var. fuscans (Burkholder) Starr & BurkholderDate d'approbation : 2011Date de révision : 2016

7-022 : Méthode sur milieu pour la détection de Microdochium nivale et M. majus sur semences de Triticum spp. (blé)Hôte : Triticum spp.Pathogène(s) : Microdochium nivale Samuels & Hallett, syn. Fusarium nivale (Fr.) Rabenh. (Stade parfait Monographella nivalis (Schaff.) Müller); M. majus (Wollenw.) Glynn & S.G.Edwards, syn. M. nivale var. majus (Wollenw.) Samuels & I.C.HallettDate d'approbation : 2018Date de revision : 2023

7-023 : Détection de Pseudomonas savastanoi pv. phaseolicola sur semences de Phaseolus vulgaris (haricot)Hôte : Phaseolus vulgaris L.Pathogène(s) : Pseudomonas savastanoi pv. phaseolicola (Burkh.) Gardan, Bollet, Abu, Ghorrah, Grimont & Grimont, syn. P. syringae pv. phaseolicola (Burkh.) Young, Dye & WilkieDate d'approbation : 2012Date de revision : 2017

7-024 : Détection du pea early browning virus et du pea seed-borne mosaic virus sur semences de Pisum sativum (pois) Hôte : Pisum sativum L.s.l.Pathogène(s) : Pea early browning virus (PEBV); pea seed-borne mosaic virus (PSbMV)Date d'approbation : 2012Date de révision : 2017

7-025 : Détection d’Aphelenchoides besseyi sur semences de Oryza sativa (riz)Hôte : Oryza sativa L.Pathogène(s) : Aphelenchoides besseyi ChristieDate d'approbation : 2019Date de révision : 2024

7-026 : Détection du squash mosaic virus, cucumber green mottle mosaic virus et melon necrotic spot virus chez les CucurbitacéesHôte : CucurbitacéesPathogène(s) : Squash mosaic virus (SqMV); cucumber green mottle mosaic virus (CGMMV); melon necrotic spot virus (MNSV)Date d'approbation : 2014Date de révision : 2019

7-027 : Détection de Pyrenophora teres et Pyrenophora graminea sur semences de Hordeum vulgare subsp. vulgare (orge)Hôte : Hordeum vulgare L. subsp. vulgarePathogène(s) : Pyrenophora teres Drechsler (Stade imparfait Drechslera teres (Sacc.) Shoem.); Pyrenophora graminea Ito & Kurib. (Stade imparfait D. graminea (Rabenh. Ex Schlecht.) Shoem.)Date d'approbation : 2011Date de révision : 2016

7-028 : Détection de tobacco mosaic virus et tomato mosaic virus infectieux sur semences de Solanum lycopersicum (tomate) par lésions locales (indexage) sur plantes de Nicotiana tabacumHôte : Solanum lycopersicum L.Pathogène(s) : Tobacco mosaic virus (TMV); tomato mosaic virus (ToMV)Date d'approbation : 2012Date de révision : 2017

7-029 : Détection de Pseudomonas syringae pv. pisi sur semences de Pisum sativum (pois)Hôte : Pisum sativum L. s.l.Pathogène(s) : Pseudomonas syringae pv. pisi (Sack.) Young, Dye & WilkieDate d'approbation : 2012Date de révision : 2017

7-030 : Détection d’ Acidovorax valerianellae sur semences de Valerianella locusta (mâche)Hôte : Valerianella locusta (L.) Laterr.Pathogène(s) : Acidovorax valerianellae sp. nov. Date d'approbation : 2014Date de révision : 2019

7-5


Cha

pter

7: S

eed

heal

th te

stin

g



7-020: Detection of Xanthomonas hortorum pv. carotae in Daucus carota (carrot) seedHost: Daucus carota L.Pathogen(s): Xanthomonas hortorum pv. carotae (Kendrick) Vauterin, Hoste, Kersters & Swings, syn. X. campestris pv. carotae (Kend) Dye Date approved: 2010Review due: 2015

7-021: Detection of Xanthomonas axonopodis pv. phaseoli and X. axonopodis pv. phaseoli var. fuscans in Phaseolus vulgaris (bean) seedHost: Phaseolus vulgaris L.Pathogen(s): Xanthomonas axonopodis pv. phaseoli (Smith) Vauterin, Hoste, Kersters & Swings, syn. X. campestris pv. phaseoli (Smith) Dye; Xanthomonas axonopodis pv. phaseoli var. fuscans Vauterin, Hoste, Kersters & Swings, syn. X. campestris pv. phaseoli var. fuscans (Burkholder) Starr & BurkholderDate approved: 2011Review due: 2016

7-022: Detection of Microdochium nivale and M. majus in Triticum spp. (wheat) seedHost: Triticum spp.Pathogen(s): Microdochium nivale Samuels & Hallett, syn. Fusarium nivale (Fr.) Rabenh. (Perfect state Monographella nivalis (Schaff.) Müller); M. majus (Wollenw.) Glynn & S.G.Edwards, syn. M. nivale var. majus (Wollenw.) Samuels & I.C.HallettDate approved: 2018Review due: 2023

7-023: Detection of Pseudomonas savastanoi pv. phaseolicola in Phaseolus vulgaris (bean) seedHost: Phaseolus vulgaris L.Pathogen(s): Pseudomonas savastanoi pv. phaseolicola (Burkh.) Gardan, Bollet, Abu, Ghorrah, Grimont & Grimont, syn. P. syringae pv. phaseolicola (Burkh.) Young, Dye & WilkieDate approved: 2012Review due: 2017

7-024: Detection of pea early browning virus and pea seed-borne mosaic virus in Pisum sativum (pea) seedHost: Pisum sativum L.s.l.Pathogen(s): Pea early browning virus (PEBV) and pea seed-borne mosaic virus (PSbMV)Date approved: 2012Review due: 2017

7-025: Detection of Aphelenchoides besseyi in Oryza sativa (rice) seedHost: Oryza sativa L.Pathogen(s): Aphelenchoides besseyi ChristieDate approved: 2019Review due: 2024

7-026: Detection of squash mosaic virus, cucumber green mottle mosaic virus and melon necrotic spot virus in cucurbit seedHost: CucurbitsPathogen(s): Squash mosaic virus (SqMV); cucumber green mottle mosaic virus (CGMMV); melon necrotic spot virus (MNSV)Date approved: 2014Review due: 2019

7-027: Detection of Pyrenophora teres and P. graminea in Hordeum vulgare subsp. vulgare (barley) seedHost: Hordeum vulgare L. subsp. vulgarePathogen(s): Pyrenophora teres Drechsler (Imperfect state Drechslera teres (Sacc.) Shoem.); Pyrenophora graminea Ito & Kurib. (Imperfect state D. graminea (Rabenh. Ex Schlecht.) Shoem.)Date approved: 2011Review due: 2016

7-028: Detection of infectious tobacco mosaic virus and tomato mosaic virus in Solanum lycopersicum (tomato) seed by the local lesion assay (indexing) in Nicotiana tabacum plantsHost: Solanum lycopersicum L.Pathogen(s): Tobacco mosaic virus (TMV); tomato mosaic virus (ToMV)Date approved: 2012Review due: 2017

7-029: Detection of Pseudomonas syringae pv. pisi in Pisum sativum (pea) seedHost: Pisum sativum L.s.l.Pathogen(s): Pseudomonas syringae pv. pisi (Sack.) Young, Dye & WilkieDate approved: 2012Review due: 2017

7-030: Detection of Acidovorax valerianellae in Valerianella locusta (corn salad) seedHost: Valerianella locusta (L.) Laterr.Pathogen(s): Acidovorax valerianellae sp. nov. Date approved: 2014Review due: 2019




7-6

7-031: Método de filtración para la detección de Ditylenchus dipsaci en semillas de Medicago sativa (alfalfa); D. dipsaci y D. gigas en semillas de Vicia faba (haba)Huésped: Medicago sativa L. y Vicia faba L.Patógeno(s): Ditylenchus dipsaci Kuhn, 1857; Ditylenchus gigas n. sp.Fecha de aprobación: 2017Revisión programada: 2022

7-032: Detección de Verticillium dahliae en semillas de Spinacia oleracea (espinaca)Huésped: Spinacia oleracea L.Patógeno(s): Verticillium dahliae Kleb.Fecha de aprobación: 2017Revisión programada: 2022




7-031: Filtrationsmethode für den Nachweis von Ditylenchus dipsaci an Medicago sativa; D. dipsaci und D. gigas an Vicia fabaWirtspflanze: Medicago sativa L. und Vicia faba LKrankheitserreger: Ditylenchus dipsaci Kuhn, 1857; Ditylenchus gigas n. sp.Freigabetermin: 2017Termin der Überprüfung: 2022

7-032: Nachweis von Verticillium dahliae an Spinacia oleracea (Spinat) Samen Wirtspflanze: Spinacia oleracea L.Krankheitserreger: Verticillium dahliae Kleb. Freigabetermin: 2017Termin der Überprüfung: 2022




7-031 : Méthode de filtration pour la détection de Ditylenchus dipsaci sur semences de Medicago sativa (luzerne) ; D. dipsaci et D. gigas sur semences de Vicia faba (féverole)Hôte : Medicago sativa L. et Vicia faba L.Pathogène(s) : Ditylenchus dipsaci Kuhn, 1857; Ditylenchus gigas n. sp. Date d'approbation : 2017Date de révision : 2022

7-032 : Détection de Verticillium dahliae sur semences de Spinacia oleracea (épinard)Hôte : Spinacia oleracea L.Pathogène(s) : Verticillium dahliae KlebDate d'approbation : 2017Date de révision : 2022



Cha

pter

7: S

eed

heal

th te

stin



7-031: Filtration method for detection of Ditylenchus dipsaci in Medicago sativa; D. dipsaci and D. gigas in Vicia fabaHost: Medicago sativa L. and Vicia faba L.Pathogen(s): Ditylenchus dipsaci Kuhn, 1857; Ditylenchus gigas n. sp.Date approved: 2017Review due: 2022

7-032: Detection of Verticillium dahliae in Spinacia oleracea (spinach) seedHost: Spinacia oleracea L.Pathogen(s): Verticillium dahliae Kleb.Date approved: 2017Review due: 2022


Règles Internationales Reglas Internacionales para Análisis ......Reglas Internacionales para...

Documents

Transcript of Règles Internationales Reglas Internacionales para Análisis ......Reglas Internacionales para...